中文摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-14页 |
第一章 引言 | 第15-19页 |
1.1 隐花色素 | 第15-17页 |
1.1.1 光对植物的作用 | 第15页 |
1.1.2 隐花色素 | 第15-16页 |
1.1.3 植物隐花色素研究进展 | 第16-17页 |
1.2 本文的立题依据和研究内容 | 第17-19页 |
1.2.1 立题依据 | 第17页 |
1.2.2 研究内容 | 第17-18页 |
1.2.3 研究方法 | 第18-19页 |
第二章 玉米隐花色素ZmCRY1a1 ZmCRY1a2的克隆及序列分析 | 第19-31页 |
2.1 材料与方法 | 第19-25页 |
2.1.1 材料 | 第19页 |
2.1.2 玉米叶片总RNA提取和cDNA第一链合成 | 第19-21页 |
2.1.3 基因cDNA全长获得 | 第21-23页 |
2.1.4 克隆载体转化细菌 | 第23-25页 |
2.1.5 菌株和载体 | 第25页 |
2.1.6 酶和试剂 | 第25页 |
2.2 玉米ZmCRY1a的基因序列比对、结构预测与进化树分析 | 第25-26页 |
2.2.1 序列分析 | 第25-26页 |
2.2.2 结构域比对分析 | 第26页 |
2.2.3 基因结构分析 | 第26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-29页 |
2.3.1 ZmCRY1a的克隆 | 第26-27页 |
2.3.2 ZmCRY1a与其他单子叶植物的CRY1具有相同结构域和较高同源性 | 第27-29页 |
2.4 结论与讨论 | 第29-31页 |
第三章 玉米隐花色素ZmCRY1a1 ZmCRY1a2的表达模式分析 | 第31-39页 |
3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
3.1.1 材料的培养及取材 | 第31页 |
3.1.2 植物总RNA的提取、纯化、反转录成cDNA | 第31页 |
3.1.3 酶和试剂 | 第31页 |
3.1.4 荧光定量RT-PCR(qRT-PCR) | 第31-32页 |
3.1.5 数据处理 | 第32-33页 |
3.2 结果与分析 | 第33-38页 |
3.2.1 2个ZmCRY1a的器官特异性分析 | 第33-34页 |
3.2.2 2个ZmCRY1a转录表达对不同光质的响应 | 第34-36页 |
3.2.4 玉米隐花色素1a与开花 | 第36-38页 |
3.3 结论 | 第38-39页 |
第四章 ZmCRY1a1和ZmCRY1a2的拟南芥遗传转化 | 第39-44页 |
4.1 材料与方法 | 第39-42页 |
4.1.1 材料 | 第39页 |
4.1.2 菌株和载体 | 第39页 |
4.1.3 酶和试剂 | 第39页 |
4.1.4 ZmCRY1a过量表达载体的构建 | 第39-40页 |
4.1.5 农杆菌转化 | 第40-42页 |
4.2 结果与分析 | 第42-43页 |
4.2.1 ZmCRY1a过量表达载体的构建 | 第42-43页 |
4.2.2 拟南芥转基因植株T0代获得 | 第43页 |
4.3 结论 | 第43-44页 |
第五章 结论与讨论 | 第44-47页 |
5.1 结论 | 第44页 |
5.2 讨论 | 第44-45页 |
5.2.1 玉米隐花色素1a有两个克隆 | 第44页 |
5.2.2 两个玉米隐花色素1a基因对光质的响应能力不同 | 第44-45页 |
5.3 展望 | 第45-47页 |
参考文献 | 第47-52页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-55页 |
个人简况及联系方式 | 第55-57页 |