| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-22页 |
| 1 成人T细胞白血病及HTLV-1病毒 | 第12-14页 |
| ·成人T细胞白血病 | 第12页 |
| ·HTLV-1病毒 | 第12-14页 |
| 2 病毒蛋白HBZ | 第14-18页 |
| ·HBZ基因 | 第14-15页 |
| ·HBZ的生物学功能 | 第15-18页 |
| 3 C/EBPα研究进展 | 第18-21页 |
| ·C/EBPα蛋白 | 第18-20页 |
| ·C/EBPα蛋白与肿瘤 | 第20-21页 |
| 4 本课题的研究目的和意义 | 第21-22页 |
| 第一章 C/EBPα在ATL中异常高表达 | 第22-34页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·细胞株 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| ·主要试剂的配制 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-29页 |
| ·细胞复苏 | 第23-24页 |
| ·细胞培养及传代 | 第24页 |
| ·细胞冻存 | 第24页 |
| ·细胞总RNA提取与cDNA合成 | 第24-26页 |
| ·实时定量PCR | 第26页 |
| ·免疫印迹检测 | 第26-29页 |
| ·分离PBMC细胞 | 第29页 |
| ·实验结果 | 第29-32页 |
| ·C/EBPα基因在ATL细胞中高表达 | 第29-31页 |
| ·CEBPA基因在ATL病人样品中高表达 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| 第二章 HBZ通过激活CEBPA基因启动子从而促进C/EBPα表达 | 第34-46页 |
| ·实验材料 | 第34-36页 |
| ·细胞株 | 第34页 |
| ·质粒 | 第34页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·主要试剂的配制 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-41页 |
| ·293FT细胞培养 | 第36页 |
| ·质粒大量制备 | 第36-37页 |
| ·质粒浓缩与纯化 | 第37页 |
| ·质粒转染 | 第37-38页 |
| ·报告基因检测 | 第38页 |
| ·染色质免疫共沉淀 | 第38-41页 |
| ·实验结果 | 第41-44页 |
| ·HBZ上调C/EBPα的表达 | 第41-42页 |
| ·HBZ通过激活CEBPA基因启动子促进C/EBPα表达 | 第42-44页 |
| ·讨论 | 第44-46页 |
| 第三章 HBZ通过与C/EBPα结合从而抑制C/EBPα信号通路 | 第46-52页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·质粒 | 第46页 |
| ·主要试剂 | 第46页 |
| ·主要仪器 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·蛋白免疫共沉淀 | 第47-48页 |
| ·实验结果 | 第48-50页 |
| ·HBZ抑制C/EBPα信号通路 | 第48页 |
| ·HBZ通过与C/EBPα结合从而抑制C/EBPα信号通路 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 第四章 HBZ通过抑制C/EBPα靶基因从而促进肿瘤细胞生长 | 第52-58页 |
| ·实验材料 | 第52页 |
| ·细胞株及主要试剂 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-54页 |
| ·PCR反应及琼脂糖凝胶电泳 | 第52-54页 |
| ·实验结果 | 第54-56页 |
| ·HBZ在体外细胞水平上抑制C/EBPα靶基因的表达 | 第54-55页 |
| ·HBZ在体内动物水平上抑制C/EBPα靶基因的表达 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| 第五章 结论与展望 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 浙江师范大学学位论文诚信承诺书 | 第74-76页 |
