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Schizosaccharomyces pombe cdc2基因在产能微藻中的克隆与表达

摘要第1-5页
Abstract第5-9页
前言第9-11页
第一章 文献综述第11-18页
   ·能源微藻及微藻生物柴油第11-15页
     ·生物能源第11页
     ·生物柴油第11页
     ·微藻柴油及其优势第11-13页
     ·各国微藻生物柴油研究现状第13-15页
   ·cdc2基因和p34~(cdc2)第15-16页
     ·cdc2基因第15页
     ·p34~(cdc2)的结构、功能与调节第15-16页
     ·微藻的外源DNA导入方法现状第16页
   ·本论文研究的内容和意义第16-18页
     ·本论文研究的主要内容第16页
     ·本论文研究的意义第16-18页
第二章 材料与方法第18-32页
   ·实验材料第18-24页
     ·菌种和质粒第18页
     ·试剂与仪器第18-20页
       ·主要试剂第18-20页
       ·主要仪器第20页
     ·PCR引物第20-21页
     ·培养基和培养条件第21-23页
       ·S.pombe的培养基和培养条件第21页
       ·E coli DH5α的培养基和培养条件第21-22页
       ·Navicula sp.的培养基和培养条件第22-23页
     ·缓冲溶液和储备液第23-24页
       ·电泳缓冲液第23页
       ·质粒提取溶液第23页
       ·Buffer B溶液第23页
       ·微藻基因组提取溶液第23-24页
   ·实验方法第24-32页
     ·S.pombe母基因组DNA提取方法第24-26页
       ·酵母基因组DNA提取试剂盒提取法第24页
       ·酵母裂解液提取法第24-25页
       ·石英砂破胞提取法第25页
       ·S.pombe基因组DNA提取质量的检测第25-26页
     ·S.pombe cdc2基因的克隆第26-27页
       ·cdc2基因的克隆第26页
       ·PCR反应体系和反应条件第26页
       ·SanPrep柱式DNA胶回收试剂盒的操作方法第26-27页
     ·表达载体构建第27-29页
       ·菌种的活化第27页
       ·碱法提取质粒pBI121第27-28页
       ·重组载体的构建第28页
       ·感受态细胞的制备第28-29页
       ·感受态细胞的转化第29页
       ·重组载体的验证第29页
     ·重组载体在电转化舟形藻中的表达第29-31页
       ·舟形藻细胞密度的测定方法第29-30页
       ·舟形藻电转化方法第30页
       ·舟形藻细胞转化效率的检测第30页
       ·重组载体在电转化舟形藻中表达情况的检测第30-31页
     ·转基因成功的舟形藻测定方法第31-32页
       ·生长曲线的测定第31页
       ·单位时间内产油量的测定第31-32页
第三章 结果与讨论第32-52页
   ·S.pombe cdc2基因的克隆第32-37页
     ·S.pombe基因组DNA的提取第32-33页
     ·S.pombe cdc2基因的克隆第33-34页
     ·粟酒裂殖酵母cdc2基因的单克隆测序第34-37页
   ·pBI121表达载体的构建第37-46页
     ·表达载体构建的质粒图谱第37-38页
     ·含有表达载体质粒pBI121大肠杆菌的活化第38-39页
     ·碱法提取表达载体质粒pB1121第39-40页
     ·重组表达载体的构建第40-46页
       ·表达载体质粒pBI121和目的基因cdc2的双酶切第40-44页
       ·表达载体质粒pBI121和目的基因cdc2的连接第44-46页
   ·重组载体在电转化舟形藻中的表达第46-48页
     ·舟形藻细胞密度的测定第46-47页
     ·舟形藻细胞转化效率的检测第47-48页
     ·重组载体在电转化舟形藻中表达情况的检测第48页
   ·转基因成功的舟形藻测定方法第48-50页
     ·生长曲线的测定第48-49页
     ·单位时间内产油量的测定第49-50页
   ·讨论第50-52页
     ·S.pombe基因组DNA的提取方法第50页
     ·构建载体过程中酶切位点的选择第50页
     ·大肠杆菌的连接转化过程第50-52页
第四章 结论第52-53页
参考文献第53-57页
致谢第57页

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