摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
第1章 引言 | 第11-33页 |
·糖生物学概述 | 第12-23页 |
·糖生物学简介 | 第12-13页 |
·糖生物学功能 | 第13-17页 |
·凝集素概述 | 第17-23页 |
·凝集素简介 | 第17-19页 |
·凝集素和糖相互作用 | 第19-23页 |
·生物传感器及其研究进展 | 第23-31页 |
·生物传感器的原理和特点 | 第23-24页 |
·电化学发光生物传感器的研究进展 | 第24-25页 |
·糖/凝集生物传感器 | 第25-31页 |
·基于糖/凝集细菌生物传感器 | 第26-27页 |
·基于糖/凝集细胞生物传感器 | 第27-31页 |
·本论文选题背景、研究思路和研究内容 | 第31-33页 |
第2章 大肠杆菌电化学发光生物传感器的研究 | 第33-51页 |
·引言 | 第33-35页 |
·实验部分 | 第35-38页 |
·试剂与仪器 | 第35-37页 |
·电化学发光探针(Rul-Con A)的制备方法 | 第37页 |
·细菌的培养和计数的方法 | 第37-38页 |
·电化学发光生物传感器的制备方法 | 第38页 |
·电化学发光的测量方法 | 第38页 |
·结果与讨论 | 第38-50页 |
·电化学发光探针的UV-Vis表征和电化学发光行为 | 第38-41页 |
·电化学发光传感器组装的EIS表征和测试条件优化 | 第41-46页 |
·电化学发光传感器的特性 | 第46-49页 |
·电化学发光传感器对E.coli的检测传感器的性能 | 第46-47页 |
·细菌与单糖和ConA相互作用的研究 | 第47-49页 |
·电化学发光传感器对ConA和甘露聚糖结合常数的测定 | 第49-50页 |
·结论 | 第50-51页 |
第3章 Ramos细胞电化学发光生物传感器的研究 | 第51-75页 |
·引言 | 第51-53页 |
·实验部分 | 第53-58页 |
·试剂与仪器 | 第53-56页 |
·电化学发光探针G5-Ru1-TD05和Ru1-TD05的制备方法 | 第56-57页 |
·Ramos细胞的培养和计数方法 | 第57-58页 |
·电化学发光生物传感器的制备方法 | 第58页 |
·电化学发光的测量方法 | 第58页 |
·结果与讨论 | 第58-72页 |
·电化学发光探针Ru1-TD05 and G5-Ru1-TD05的表征 | 第58-62页 |
·电化学发光生物传感器组装及检测过程的EIS表征 | 第62-63页 |
·捕获探针和信号探针连接臂长度对电化学发光信号的影响 | 第63-66页 |
·捕获探针浓度的选择和电化学发光传感器孵育时间的选择 | 第66-68页 |
·电化学发光生物传感器的性能 | 第68-71页 |
·测定Ramos细胞线性范围和检出限 | 第68-69页 |
·电化学发光生物传感器的选择性 | 第69-71页 |
·原子力成像(AFM)研究Ramos细胞与探针的相互作用 | 第71-72页 |
·结论 | 第72-75页 |
第4章 PC-3细胞电化学发光生物传感器的研究 | 第75-93页 |
·引言 | 第75-77页 |
·实验部分 | 第77-80页 |
·试剂与仪器 | 第77-79页 |
·电化学发光探针(Ru1-WGA)的制备方法 | 第79页 |
·细胞的培养和激光共聚焦成像方法 | 第79页 |
·电化学发光生物传感器的制备方法 | 第79-80页 |
·电化学发强度的测量方法 | 第80页 |
·结果与讨论 | 第80-91页 |
·电化学发光探针Ru1-WGA的紫外表征 | 第80-82页 |
·电化学发光传感器组装和检测过程的EIS表征 | 第82-83页 |
·捕获探针浓度的选择和孵育时间的选择 | 第83-85页 |
·电化学发光生物传感器的性能 | 第85-88页 |
·检测PSA和PC-3细胞的线性和检出限 | 第85-88页 |
·电化学发光生物传感器的选择性 | 第88页 |
·激光共聚焦成像研究PC-3细胞与Ru1-WGA相互作用 | 第88-91页 |
·结论 | 第91-93页 |
第5章 结论和展望 | 第93-95页 |
·结论 | 第93-94页 |
·展望 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-109页 |
致谢 | 第109-111页 |
攻读博士学位期间的研究成果 | 第111页 |