| 英文缩略词表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| 英文摘要 | 第14-18页 |
| 实验研究 | 第18-83页 |
| 实验一:木瓜苷及儿荼素对大鼠佐剂性关节炎的治疗作用 | 第18-51页 |
| 1 前言 | 第18-19页 |
| 2 实验材料 | 第19-22页 |
| ·动物 | 第19页 |
| ·药物与试剂 | 第19-21页 |
| ·仪器 | 第21-22页 |
| 3 实验方法 | 第22-27页 |
| ·大鼠AA 模型的建立 | 第22页 |
| ·动物分组与给药方案 | 第22页 |
| ·关节肿胀度测定 | 第22页 |
| ·屈关节疼痛评分 | 第22页 |
| ·多发性关节炎指数评分 | 第22-23页 |
| ·滑膜组织采集 | 第23页 |
| ·滑膜细胞的分离与培养 | 第23页 |
| ·滑膜细胞上清液的制备 | 第23-24页 |
| ·IL-1 活性测定 | 第24页 |
| ·TNFα含量测定 | 第24页 |
| ·PGE_2 含量测定 | 第24-25页 |
| ·滑膜成纤维细胞增殖反应 | 第25页 |
| ·滑膜细胞cAMP 含量测定 | 第25-27页 |
| ·膝关节病理组织学检查 | 第27页 |
| ·统计学处理 | 第27页 |
| 4 实验结果 | 第27-41页 |
| ·GCS 和 Cat 对 AA 大鼠的治疗作用 | 第27-31页 |
| ·对 AA 大鼠继发侧关节肿胀度的影响 | 第27-29页 |
| ·对关节疼痛评分的影响 | 第29-30页 |
| ·对多发性关节炎指数的影响 | 第30-31页 |
| ·GCS 和 Cat 对滑膜细胞产生IL-1、 TNFα和PGE_2 水平影响 | 第31-32页 |
| ·GCS 和 Cat 对滑膜细胞增殖反应的影响 | 第32-36页 |
| ·滑膜细胞培养 | 第32-33页 |
| ·GCS 和 Cat 体内用药对滑膜细胞增殖能力的影响 | 第33-34页 |
| ·GCS 和Cat 体内用药后滑膜细胞培养上清液对 FLS 增殖的影响 | 第34-35页 |
| ·GCS 和Cat 体外用药对 FLS 增殖能力的影响 | 第35-36页 |
| ·GCS 和Cat 对AA 大鼠滑膜细胞cAMP 水平的影响 | 第36-38页 |
| ·GCS 和Cat 体内给药对AA 大鼠滑膜细胞cAMP 水平的影响 | 第36-37页 |
| ·GCS 和Cat 体外用药对AA 大鼠滑膜细胞cAMP 水平的影响 | 第37-38页 |
| ·GCS 和Cat 对AA 大鼠滑膜细胞cAMP 水平的影响与增殖反应的关系 | 第38页 |
| ·GCS 和Cat 体内给药对AA 大鼠滑膜细胞增殖反应与cAMP 的关系 | 第38页 |
| ·GCS 和Cat 体外用药抑制AA 大鼠滑膜细胞增殖反应与cAMP 的关系 | 第38页 |
| ·病理形态学检查 | 第38-41页 |
| 5 讨论 | 第41-45页 |
| ·对 AA 大鼠继发性炎症反应及关节局部病理改变的影响 | 第41-42页 |
| ·抑制AA 大鼠滑膜细胞异常分泌功能是GCS 和Cat 缓解关节炎症机制之一 | 第42-44页 |
| ·调节cAMP 水平是GCS 和Cat 抑制滑膜过度增殖的重要机制之一 | 第44页 |
| ·GCS 是木瓜祛风湿的主要有效部位? Cat 可能是有效成分之一 | 第44-45页 |
| 6 小结 | 第45页 |
| 7 参考文献 | 第45-51页 |
| 实验二 IL-1α对佐剂性关节炎大鼠滑膜细胞前列腺素受体脱敏的影响及木瓜苷和儿茶索的作用 | 第51-83页 |
| 1 前言 | 第51-53页 |
| 2 实验材料 | 第53-57页 |
| ·动物 | 第53页 |
| ·药物与试剂 | 第53-56页 |
| ·仪器 | 第56-57页 |
| 3 实验方法 | 第57-61页 |
| ·大鼠AA 模型的建立?动物分组与给药方案 | 第57页 |
| ·滑膜组织的采集? 滑膜细胞的分离与培养 | 第57页 |
| ·滑膜成纤维细胞的增殖反应 | 第57页 |
| ·Butaprost 作用下AA 大鼠FLS 产生cAMP 水平的检测 | 第57页 |
| ·IL-1α作用下AA 大鼠FLS 产生PGE2 和cAMP 水平的检测 | 第57-58页 |
| ·Western blot 法检测滑膜组织和细胞EP2? GRK?β-arresti111 的表达 | 第58-61页 |
| ·滑膜组织蛋白的提取 | 第58页 |
| ·滑膜细胞蛋白的提取 | 第58-59页 |
| ·蛋白定量 | 第59-60页 |
| ·Western blot操作步骤 | 第60-61页 |
| ·统计学处理 | 第61页 |
| 4 结果 | 第61-72页 |
| ·GCS 和Cat 对IL-1α诱导AA 大鼠FLS 增殖的影响 | 第61-63页 |
| ·Butaprost 作用下AA 大鼠FLS 产生cAMP 水平的影响 | 第63-64页 |
| ·Butaprost 体外刺激FLS 不同时间产生的cAMP 水平的影响 | 第63页 |
| ·GCS 和Cat 体外用药对Butaprost 诱导FLS 产生cAMP 的影响 | 第63-64页 |
| ·IL-1α作用下AA 大鼠FLS 产生PGE_2 和cAMP 水平的检测 | 第64-66页 |
| ·IL-1α体外作用FLS 不同时间产生PGE_2 和cAMP 的水平 | 第64-65页 |
| ·GCS 和Cat 体外用药对IL-1α诱导FLS 产生PGE_2 和cAMP 的影响 | 第65-66页 |
| ·GCS 和Cat 体内给药对AA 大鼠滑膜组织EP_2 表达的影响 | 第66-67页 |
| ·GCS 和Cat 体内给药对AA 大鼠滑膜组织GRK2、β-arrestin1 表达的影响 | 第67-68页 |
| ·IL-1α对AA 大鼠FLS GRK2 及β-arrestin1 表达的影响 | 第68-71页 |
| ·IL-1α对AA 大鼠FLS GRK2 及β-arrestin1 表达总量的影响 | 第68-69页 |
| ·IL-1α对AA 大鼠FLS 细胞膜GRK2 及β-arrestin1 表达的影响 | 第69-71页 |
| ·GCS 和Cat 体外给药对IL-1α作用的AA 大鼠FLS 细胞膜GRK2 及β-arrestin1 表达的影响 | 第71-72页 |
| 5 讨论 | 第72-76页 |
| ·抑制AA 大鼠FLS 过度增殖?调节cAMP 水平是GCS 和Cat 的主要作用机制之一 | 第72-74页 |
| ·GCS 和Cat 影响EP2 受体的表达可能是其发挥作用的主要机制之一 | 第74-75页 |
| ·影响细胞膜GRK2?β-arresti111 的表达可能是GCS 和Cat 影响脱敏的重要机制 | 第75-76页 |
| 6 小结 | 第76-77页 |
| 7 参考文献 | 第77-83页 |
| 总结 | 第83-84页 |
| 本研究创新点 | 第84-85页 |
| IL-1α对AA 大鼠FLSEP2受体脱敏的影响及GCS 和Cat 的作用示意图 | 第85-86页 |
| 附录 | 第86-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
| 综述:G 蛋白偶联受体的脱敏 | 第90-106页 |
