| 目录 | 第1-10页 |
| 致谢 | 第10-11页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-34页 |
| 1. 引言 | 第16-18页 |
| 2. 拟南芥的侧根发育 | 第18-30页 |
| ·侧根形成的发育过程 | 第18-19页 |
| ·生长素介导的细胞周期的激活 | 第19-20页 |
| ·生长素的生物合成、动态平衡和运输 | 第20-23页 |
| ·生长素的生物合成和动态平衡相关突变体 | 第20-21页 |
| ·生长素的运输相关突变体 | 第21-23页 |
| ·侧根形成中的生长素信号转导 | 第23-29页 |
| ·SCF~(TIR/AFBs)复合物蛋白降解途径 | 第23页 |
| ·Anx/IAAs和ARFs:生长素介导的生长发育的转录调控因子 | 第23-27页 |
| ·SLR/IAA14和ARF7/ARF19介导生长素响应的转录 | 第27-28页 |
| ·侧根发育中组织特异的生长素信号转导的作用 | 第28页 |
| ·其它生长素介导的侧根形成的调控因子 | 第28-29页 |
| ·光信号和生长素介导的侧根形成之间的互作 | 第29-30页 |
| 3. 其它物种的侧根突变体 | 第30-32页 |
| ·水稻的根系突变体研究 | 第30-31页 |
| ·玉米侧根形成的突变体研究 | 第31页 |
| ·番茄中侧根形成突变体的研究 | 第31-32页 |
| 4. Cyclophilins家族的研究进展 | 第32-34页 |
| 第二章 突变体的筛选和表型分析 | 第34-55页 |
| 1. 材料与方法 | 第34-39页 |
| ·材料 | 第34页 |
| ·方法 | 第34-39页 |
| ·突变体筛选 | 第34-35页 |
| ·水稻生长条件 | 第35-36页 |
| ·表型分析 | 第36-38页 |
| ·表型观察 | 第36页 |
| ·植株生长与根部参数分析 | 第36页 |
| ·侧根原基形成的观察 | 第36-37页 |
| ·根部向重力性反应分析 | 第37页 |
| ·花药观察 | 第37页 |
| ·花粉活性检测 | 第37页 |
| ·全生育期性状分析 | 第37-38页 |
| ·生长素相关分析 | 第38-39页 |
| ·NPA抗性分析 | 第38页 |
| ·NAA抗性分析 | 第38页 |
| ·IAA含量的测定 | 第38-39页 |
| 2. 结果与分析 | 第39-52页 |
| ·突变体的筛选和突变体的表型分析 | 第39-46页 |
| ·突变体的筛选 | 第39页 |
| ·突变体表型观察及根部参数变化 | 第39-43页 |
| ·侧根原基形成的观察 | 第43页 |
| ·根部向重力性反应分析 | 第43-45页 |
| ·花药观察和花粉活性检测 | 第45页 |
| ·全生育期性状分析 | 第45-46页 |
| ·生长素相关分析 | 第46-52页 |
| ·NPA抗性分析 | 第46-49页 |
| ·NAA抗性分析 | 第49-52页 |
| ·IAA含量测定的分析 | 第52页 |
| 3. 小结与讨论 | 第52-55页 |
| 第三章 lrl1突变体基因定位 | 第55-70页 |
| 1. 材料与方法 | 第55-62页 |
| ·材料 | 第55页 |
| ·方法 | 第55-62页 |
| ·F_2群体的创建 | 第55-56页 |
| ·突变基因的遗传分析和F_2群体DNA的提取 | 第56-57页 |
| ·突变基因的图位克隆 | 第57-62页 |
| ·图位克隆的方法 | 第57-62页 |
| ·SSR与STS分析方法 | 第57-58页 |
| ·TILLING方法分析 | 第58-60页 |
| ·dCAPS(derived cleaved amplified polymorphic sequence)分析 | 第60-61页 |
| ·基因测序分析 | 第61-62页 |
| 2. 结果与分析 | 第62-69页 |
| ·F2群体的创建和遗传分析 | 第62-63页 |
| ·初步定位 | 第63-64页 |
| ·准确定位 | 第64-65页 |
| ·精细定位 | 第65-67页 |
| ·候选基因测序分析 | 第67-69页 |
| 3. 小结与讨论 | 第69-70页 |
| 第四章 lrl2与lrl3突变体等位验证 | 第70-73页 |
| 1. 材料与方法 | 第70页 |
| ·材料 | 第70页 |
| ·方法 | 第70页 |
| 2. 等位突变体的遗传分析与等位验证 | 第70-72页 |
| ·lrl2与lrl3突变体遗传分析 | 第70页 |
| ·初步定位 | 第70-71页 |
| ·测序分析 | 第71页 |
| ·等位突变体的凝胶电泳检测 | 第71-72页 |
| 3. 小结与讨论 | 第72-73页 |
| 第五章 基因结构、表达与蛋白序列分析 | 第73-88页 |
| 1. 材料与方法 | 第73-80页 |
| ·材料 | 第73页 |
| ·方法 | 第73-80页 |
| ·基因结构分析 | 第73-76页 |
| ·野生型和突变体DNA和RNA的准备 | 第74-75页 |
| ·逆转录 | 第75-76页 |
| ·PCR反应 | 第76页 |
| ·基因表达分析 | 第76-77页 |
| ·实时定量RT-PCR分析OsCYP2基因在不同组织中的表达 | 第76-77页 |
| ·IAA处理条件下生长素相关基因的表达分析 | 第77-79页 |
| ·半定量RT-PCR检测生长素运输相关基因的表达 | 第77-78页 |
| ·实时定量RT-PCR检测生长素相关基因的表达 | 第78-79页 |
| ·OsCYP2蛋白序列分析 | 第79页 |
| ·OsCYP2同源分析 | 第79-80页 |
| 2. 结果与分析 | 第80-86页 |
| ·基因结构分析 | 第80-81页 |
| ·基因结构 | 第80-81页 |
| ·基因表达分析 | 第81-82页 |
| ·OsCYP2基因的组织表达模式 | 第81-82页 |
| ·IAA处理条件下生长素相关基因的表达分析 | 第82-83页 |
| ·半定量RT-PCR检测生长素运输相关基因的表达 | 第82-83页 |
| ·实时定量RT-PCR检测生长素相关基因的表达 | 第83页 |
| ·OsCYP2蛋白序列分析 | 第83-84页 |
| ·OsCYP2等位基因的蛋白序列预测 | 第83-84页 |
| ·OsCYP2同源分析 | 第84-86页 |
| 3. 小结与讨论 | 第86-88页 |
| 第六章 结论与展望 | 第88-90页 |
| 1. 结论 | 第88-89页 |
| 2. 展望 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-103页 |
