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以HCMVUL54为靶基因构建M1GS真核表达载体及两个M1GS体内活性的检测

摘要第1-8页
Abstract第8-10页
一 前言第10-23页
 1.核酶的发现及分类第10页
 2.RNase P作为分子剪刀的历史以及设计原则第10-13页
 3.M1GS在细胞内稳定,分布和表达第13-18页
 4.M1GS技术的优点第18-19页
 5.HCMV简介第19-22页
 6.课题意义第22-23页
二 材料和方法第23-39页
 1 主要仪器设备第23页
 2 材料第23-27页
   ·细胞株第23-24页
   ·质粒和菌株第24页
   ·引物和测序第24页
   ·主要试剂和试剂盒第24-25页
   ·培养基的配制第25页
     ·细菌培养基的配置第25页
     ·细胞培养基的配置第25页
     ·血清的处理第25页
   ·其他常用试剂的配置第25-27页
     ·质粒DNA提取及纯化所需试剂第25-26页
     ·细胞培养常用试剂的配制第26页
     ·琼脂糖凝胶电泳所需溶液第26页
     ·所需抗生素的配置第26-27页
     ·Northern blot杂交所用试剂配置第27页
 3 实验路线及方法第27-39页
   ·核酶T4-M1GS和T7-M1GS的克隆第28-32页
     ·核酶M1GS克隆技术路线第28-29页
     ·核酶T4-M1GS和T7-M1GS两端引物的设计第29页
     ·PCR扩增核酶基因第29页
     ·凝胶回收纯化第29-30页
     ·载体pLXSN的制备第30页
     ·插入片段(核酶T4-M1GS和T7-M1GS PCR片段)和载体(pLXSN)的双酶切、连接第30页
     ·制备感受态第30-31页
     ·转化第31页
     ·碱裂解法抽提质粒验证第31-32页
   ·底物片段的克隆第32-34页
     ·底物片段克隆技术路线第32页
     ·底物片段54-C和54-D两端引物的设计第32-33页
     ·PCR扩增(54-C,54-D,54-CD)第33页
     ·凝胶回收纯化第33页
     ·载体pEGFP-N1的制备第33页
     ·插入片段(核酶PCR片段)和载体(pEGFP-N1)的双酶切、连接第33-34页
     ·制备感受态第34页
     ·转化第34页
     ·快速抽提法抽提质粒验证第34页
   ·细胞复苏和细胞冻存第34页
   ·检测Hela细胞耐受G418的临界值第34-35页
   ·细胞转染,G418筛选第35-36页
     ·转染试剂为Lipofectamine和Plus共用的转染方案第35页
     ·转染试剂为Lipofectamine 2000的转染方案第35-36页
   ·基因组的抽提、鉴定第36页
   ·RNA的抽提第36页
   ·RT-PCR第36-37页
   ·Northern blot第37-39页
三 结果与分析第39-47页
 1.pLXSN质粒扩增,测序,确定U6启动子的存在及MCS位点第39页
 2.扩增T4-M1GS,T7-M1GS的DNA片段,克隆至pLXSN载体上,鉴定第39-40页
 3.扩增底物UL54-C,UL54-D,UL54-CD的DNA片段,克隆至pEGFP载体上,鉴定第40-42页
 4.核酶重组质粒和pEGFP-N1质粒共转染Hela细胞,荧光显微镜检测第42-43页
 5.核酶重组质粒T4-M1GS-pLXSN和底物重组质粒UL54-C-GFP共转染Hela细胞中,荧光显微镜检测第43-44页
 6.将底物重组质粒UL54-CD-GFP转染核酶T4-M1GS稳定表达的Hela细胞中,Northern blot检测第44-46页
 7.核酶重组质粒T7-M1GS-pLXSN与底物重组质粒UL54-CD-GFP共转染Hela细胞,Northern blot检测第46-47页
四 讨论第47-53页
 1.关于M1GS的可能用途第47-48页
 2.M1GS的不足第48-50页
 3.使用具有报告基团的载体所注意的事项第50-53页
五 结论第53-54页
附录第54-60页
 附录1 U6-pLXSN测序结果第54页
 附录2 NCBI上的U6 snRNA序列第54-56页
 附录3 T4-M1GS-pLXSN测序序列第56-57页
 附录4 T7-M1GS-pLXSN测序序列第57页
 附录5 UL54基因全长测序结果(序列)第57-59页
 附录6 pEGFP-N1载体测序结果第59-60页
参考文献第60-65页
致谢第65-66页

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