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在人支气管上皮细胞恶性转化过程中Smad7基因的功能研究

第一章 文献综述第1-26页
   ·转化生长因子-β1的研究进展第12-17页
     ·TGF-β1前体的活化机制第12-13页
     ·TGF-β1信号转导通路第13页
     ·TGF-β1表达改变同人类疾病的关系第13-16页
     ·TGF-β1的基因多态性及同疾病的关系第16-17页
   ·作为抑癌基因的TGF-β1受体第17页
   ·TGF-β胞内信号分子SMADs第17-19页
     ·Smad2、4突变或表达丢失同肿瘤发生的关系第18页
     ·Smad3同肿瘤发生的关系第18-19页
     ·抑制TGF-β信号转导通路的Smads:Smad7第19页
   ·RNA干涉技术第19-24页
     ·RNA干涉现象的发现史第19-21页
     ·RNA干涉的作用机制第21页
     ·RNA干涉的特点及siRNAs的产生方法第21-22页
     ·RNAi技术的应用第22-24页
   ·立题依据第24-26页
第二章 Smad7基因在细胞模型中的异常表达及对TGF-β1刺激的应答第26-32页
   ·实验材料第26-27页
     ·细胞和基因来源第26页
     ·主要实验仪器和设备第26-27页
     ·主要试剂和耗材第27页
   ·实验方法第27-28页
     ·细胞培养及TGF-β1处理第27页
     ·RNA提取第27页
     ·Northern杂交第27-28页
   ·实验结果分析第28-31页
     ·BEP2D细胞和BERP35T2细胞Smad7 mRNA表达分析第28-29页
     ·BEP2D和BERP35T2细胞中Smad7对TGF-β1刺激的应答第29-31页
   ·讨论第31-32页
第三章 Smad7基因过表达对细胞增殖及TGF-β1介导的细胞生长抑制效应的影响第32-40页
   ·实验材料第32页
   ·实验方法第32-35页
     ·Smad7基因稳定转染BEP2D及BERP35T2细胞第32页
     ·Western blot第32-35页
     ·细胞生长、增殖能力检测第35页
     ·TGF-β1对各细胞系的生长抑制效应检测第35页
   ·实验结果分析第35-38页
     ·BEP2D及BERP35T2细胞的细胞生长曲线及不同浓度的TGF-β1对两细胞系的生长抑制效应第35-37页
     ·BEP2D和BERP35T2细胞稳定转染Smad7基因后筛选克隆的Western blot鉴定第37页
     ·Smad7基因对细胞生长、增殖的影响第37-38页
     ·SMAD7异位过表达的细胞对TGF-β1介导的生长抑制效应的应答第38页
   ·讨论第38-40页
第四章 利用RNA干涉技术对Smad7基因表达的阻断及其对BERP35T2细胞增殖的影响第40-49页
   ·实验材料第40页
   ·实验方法第40-45页
     ·siRNA(small interfering RNA)寡核苷酸模板的设计第40-41页
     ·siRNA寡核苷酸模板的合成第41页
     ·用体外转录的方法制备siRNA第41-43页
     ·用制备的siRNA和Smad7表达载体(质粒)瞬时转染BERP35T2细胞第43页
     ·Northern blot杂交第43-44页
     ·siRNA瞬时转染BERP35T2细胞第44-45页
     ·siRNA对BERP35T2细胞的生长抑制效应检测第45页
   ·实验结果分析第45-47页
     ·siRNA寡核苷酸模板的设计第45页
     ·siRNA寡核苷酸模板的合成第45页
     ·用体外转录的方法制备siRNA第45-46页
     ·瞬时转染BERP35T2细胞后,细胞中Smad7基因mRNA表达水平分析第46页
     ·siRNA对BERP35T2细胞的生长抑制效应检测结果第46-47页
   ·讨论第47-49页
结论第49-50页
参考文献第50-61页
附录 常用缩写词中英文对照表第61-62页
作者简介第62-63页
致谢第63页

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