苦竹的分类研究及黄酮类物质的提取检测
| 第一部分 文献综述 | 第1-25页 |
| 1 苦竹开发利用的现状 | 第11-13页 |
| ·苦竹简介 | 第11页 |
| ·形态特征 | 第11页 |
| ·资源分布与习性 | 第11页 |
| ·苦竹的开发利用 | 第11-13页 |
| 2 黄酮类化合物 | 第13-18页 |
| ·黄酮类物质分类 | 第13页 |
| ·黄酮类物质的性质 | 第13-14页 |
| ·黄酮类物质的医用价值 | 第14-15页 |
| ·黄酮类物质的提取分离 | 第15-16页 |
| ·黄酮含量测定方法 | 第16页 |
| ·竹叶黄酮化合物的开发和利用 | 第16-18页 |
| 3 植物品种鉴定的遗传标记 | 第18-22页 |
| ·形态标记鉴定法 | 第18页 |
| ·生化标记鉴定法 | 第18-19页 |
| ·分子标记鉴定法 | 第19-22页 |
| ·RFLP技术 | 第19-20页 |
| ·AFLP技术 | 第20页 |
| ·SSR技术 | 第20-21页 |
| ·RAPD技术 | 第21-22页 |
| ·RAPD在林木种质资源鉴定和系统进化研究 | 第22页 |
| 4 本实验的目的和意义 | 第22-25页 |
| 第二部分 论文正文 | 第25-51页 |
| (一) 苦竹的分类学研究 | 第25-42页 |
| 1 实验材料 | 第25-26页 |
| ·材料 | 第25-26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·试剂 | 第26页 |
| 2 实验方法 | 第26-29页 |
| ·竹叶DNA的提取方法与检测 | 第26-28页 |
| ·CTAB法 | 第26-27页 |
| ·SDS法 | 第27页 |
| ·高盐-低PH值法 | 第27-28页 |
| ·DNA浓度和纯度测定 | 第28页 |
| ·RAPD实验方法 | 第28-29页 |
| ·RAPD实验数据统计方法 | 第29页 |
| 3 结果分析 | 第29-40页 |
| ·抽提DNA的纯度和浓度测定结果 | 第29-31页 |
| ·PCR反应体系的确定 | 第31-33页 |
| ·MgCL_2浓度 | 第31-32页 |
| ·dNTP浓度 | 第32-33页 |
| ·反应体系的确定 | 第33页 |
| ·扩增条件的确定 | 第33页 |
| ·苦竹的RAPD分析 | 第33-40页 |
| ·引物筛选 | 第33-34页 |
| ·RAPD揭示苦竹基因组多态性程度 | 第34-36页 |
| ·苦竹及其近缘种的DNA多态性分析 | 第36-37页 |
| ·苦竹及近缘种聚类分析 | 第37-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| ·影响抽提实验的因素 | 第40-41页 |
| ·有关RAPD重复性、稳定性与可信度的讨论 | 第41页 |
| ·关于苦竹及近缘竹种的分子生物学分类 | 第41-42页 |
| (二) 黄酮类物质的提取检测 | 第42-51页 |
| 1 实验材料 | 第42-43页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·实验材料与处理 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-45页 |
| ·芦丁标准溶液最大吸收波长的测定 | 第43页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第43-44页 |
| ·稳定性实验 | 第44页 |
| ·提取方法的确定 | 第44页 |
| ·索氏抽提法 | 第44页 |
| ·乙醇浸提法 | 第44页 |
| ·热水浸提法 | 第44页 |
| ·乙醇超声提取法 | 第44页 |
| ·竹叶黄酮超声提取最佳工艺摸索 | 第44-45页 |
| ·苦竹及近缘竹种的总黄酮含量测定 | 第45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-48页 |
| ·芦丁标准溶液最大吸收波长 | 第45页 |
| ·芦丁标准工作曲线及工作曲线方程式的回归 | 第45-46页 |
| ·稳定性实验结果 | 第46页 |
| ·提取方法的比较 | 第46-47页 |
| ·竹叶黄酮超声提取最佳工艺 | 第47-48页 |
| ·苦竹及近缘竹种的总黄酮含量 | 第48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
