| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-7页 |
| 缩略词 | 第7-8页 |
| 序言 | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-25页 |
| 1．1 白菜类作物转基因技术研究进展 | 第10-18页 |
| 1．1．1 建立在细胞或组织培养基础上的遗传转化 | 第11-15页 |
| 1．1．2 原位渗入转化法 | 第15-18页 |
| 1．2 植物抗虫基因的研究进展 | 第18-25页 |
| 1．2．1 微生物来源的抗虫基因 | 第19-20页 |
| 1．2．2 植物来源的抗虫基因 | 第20-23页 |
| 1．2．3 动物来源的抗虫基因 | 第23-24页 |
| 1．2．4 植物抗虫基因工程存在的问题及其对策 | 第24-25页 |
| 第二章： 植物表达质粒载体的改造和构建 | 第25-32页 |
| 2．1 材料 | 第25-26页 |
| 2．2 p~（BBB-PinⅡ）质粒的去内含子 | 第26-28页 |
| 2．3 p~（SHK-SIP）质粒的构建 | 第28-32页 |
| 第三章 结球白菜的叶盘法转化及抗虫基因转化株的获得 | 第32-47页 |
| 3．1 材料 | 第32页 |
| 3．2 方法 | 第32-37页 |
| 3．2．1 无菌苗及外植体的获得 | 第32-33页 |
| 3．2．2 不定芽的再生能力比较 | 第33-34页 |
| 3．2．3 农杆菌转化 | 第34页 |
| 3．2．4 不定芽的诱导及抗性株筛选 | 第34-35页 |
| 3．2．5 抗性株嵌合体的鉴定与分离 | 第35页 |
| 3．2．6 抗性株的鉴定 | 第35-37页 |
| 3．2．7 转化植株的抗虫性测定 | 第37页 |
| 3．3 实验结果和分析 | 第37-43页 |
| 3．3．1 基因型对子叶-子叶柄形态发生的影响 | 第37-38页 |
| 3．3．2 Basta浓度对筛选结果的影响 | 第38页 |
| 3．3．3 结球白菜PinⅡ基因的转化及转化株的筛选 | 第38-39页 |
| 3．3．4 抗性株的嵌合体鉴定与分离 | 第39-40页 |
| 3．3．5 氯酚红鉴定 | 第40页 |
| 3．3．6 抗性株的分子生物学鉴定 | 第40-42页 |
| 3．3．7 PinⅡ转基因植株的抗虫性测定结果 | 第42-43页 |
| 3．4 讨论 | 第43-47页 |
| 第四章 农杆菌介导的真空渗入转化 | 第47-56页 |
| 4．1 材料准备 | 第47-48页 |
| 4．1．1 “49菜心”准备 | 第47页 |
| 4．1．2 农杆菌液的准备 | 第47-48页 |
| 4．2 真空渗入转化 | 第48页 |
| 4．3 转化株的筛选 | 第48-49页 |
| 4．3．1 处理植株的栽培管理 | 第48页 |
| 4．3．2 抗性株的筛选 | 第48-49页 |
| 4．4 抗性株的氯酚红鉴定 | 第49页 |
| 4．5 抗性株的分子生物学鉴定 | 第49页 |
| 4．6 结果 | 第49-53页 |
| 4．6．1 处理植株的结籽及转化株筛选情况 | 第49页 |
| 4．6．2 氯酚红法鉴定 | 第49-51页 |
| 4．6．3 PCR及PCR-Southern杂交结果 | 第51-52页 |
| 4．6．4 抗性株基因组DNA Southern杂交 | 第52-53页 |
| 4．7 讨论 | 第53-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-57页 |
| 5．1 植物表达质粒载体的改造和构建 | 第56页 |
| 5．2 获得PinⅡ转基因大白菜 | 第56页 |
| 5．3 获得PinⅡ转基因小白菜 | 第56-57页 |
| 附录 | 第57-64页 |
| 1 质粒的大量提取法（碱裂解法） | 第57-58页 |
| 2 碱法小量快速提取质粒 | 第58-59页 |
| 3 凝胶的玻璃奶回收法 | 第59页 |
| 4 农杆菌（电激转化）感受态细胞的制备 | 第59-60页 |
| 5 SDS法提取植物总DNA | 第60-61页 |
| 6 Southern杂交 | 第61-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
