| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 中英文对照 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-14页 |
| 第二章 鼠实验性SAH动物模型的建立及脑脊液中TGF-β_1浓度的变化 | 第14-31页 |
| ·前言 | 第14-15页 |
| ·材料与方法 | 第15-21页 |
| ·实验动物及分组 | 第15-16页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第16-17页 |
| ·方法 | 第17-20页 |
| ·统计学分析 | 第20-21页 |
| ·结果 | 第21-26页 |
| ·SAH的观察 | 第21页 |
| ·光镜下柔脑膜的观察 | 第21页 |
| ·血常规白细胞计数及淋巴细胞比例 | 第21-22页 |
| ·脑脊液中的TGF-β_1浓度及变化 | 第22-26页 |
| ·讨论 | 第26-30页 |
| ·小结 | 第30-31页 |
| 第三章 大鼠实验性SAH后柔脑膜纤维化的研究 | 第31-52页 |
| ·前言 | 第31-32页 |
| ·材料与方法 | 第32-41页 |
| ·实验动物及分组 | 第32页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33-41页 |
| ·统计学分析 | 第41页 |
| ·结果 | 第41-47页 |
| ·脑脊液中的PICP浓度及变化 | 第41-43页 |
| ·柔脑膜的MASSON染色 | 第43页 |
| ·柔脑膜CTGF免疫组织化学染色 | 第43-45页 |
| ·RT-PCR检测结果(Col Ⅰ mRNA、CTGF mRNA) | 第45-46页 |
| ·Western blot检测结果(Col Ⅰ、CTGF) | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-51页 |
| ·小结 | 第51-52页 |
| 第四章 DCN对鼠实验性SAH后柔脑膜纤维化的抑制 | 第52-67页 |
| ·前言 | 第52-53页 |
| ·材料与方法 | 第53-55页 |
| ·实验动物及分组 | 第53页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·统计学分析 | 第54-55页 |
| ·结果 | 第55-61页 |
| ·大鼠体重的变化 | 第55页 |
| ·脑脊液中的TGF-β_1浓度 | 第55-56页 |
| ·第21天脑脊液中的PICP浓度 | 第56-57页 |
| ·柔脑膜的Massen染色 | 第57-59页 |
| ·RT-PCR检测结果(Col Ⅰ mRNA、CTGF mRNA) | 第59-60页 |
| ·Western blot检测结果(Col Ⅰ、CTGF) | 第60-61页 |
| ·讨论 | 第61-66页 |
| ·小结 | 第66-67页 |
| 第五章 结论及自我评价 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 综述一 | 第77-92页 |
| 综述二 | 第92-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第104页 |
