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线虫凋亡细胞吞噬及细胞移动通路中蛋白质的表达纯化与结晶

摘要第1-6页
ABSTRACT第6-11页
前言第11-12页
文献综述第12-39页
 一、细胞凋亡研究进展第12-21页
  1 细胞凋亡第12-15页
   ·细胞凋亡的概念第12-13页
   ·细胞凋亡与细胞坏死第13-14页
   ·线虫中的细胞凋亡第14-15页
  2 凋亡细胞吞噬信号通路第15-18页
  3 吞噬细胞第二条信号通路中相关蛋白研究现状第18-19页
  4 凋亡细胞吞噬信号通路中相关蛋白的结构研究现状第19-20页
  5 本文的研究目的与意义第20-21页
 二、结构生物学实验原理和研究方法第21-39页
  1 信息检索与生物信息学分析第21-22页
  2 分子克隆实验技术和方法第22-39页
   ·目的基因片段的获得第22-24页
   ·酶切、连接、转化及融合蛋白的表达第24-25页
   ·蛋白表达体系第25-27页
   ·蛋白质纯化方法第27-28页
   ·蛋白质的结晶第28-32页
     ·晶体的X-射线衍射与结构解析第32-39页
研究报告第39-77页
 第一章 CED-2,CED-5载体构建及融合蛋白的表达纯化第39-68页
  实验1 CED-2全长表达与纯化第40-48页
   1 实验材料第40-41页
   ·质粒、菌种第40页
   ·试剂及配方第40-41页
   ·仪器第41页
   2 实验方法第41-44页
   ·重组质粒pET28a-CED-2的构建第41-43页
   ·CED-2融合蛋白的表达第43-44页
   ·CED-2融合蛋白的纯化第44页
     ·CED一2融合蛋白亲和柱初步纯化第44页
     ·蛋白质凝胶过滤纯化第44页
   3 结果与讨论第44-48页
   ·重组质粒pET28a-CED-2的构建第44-45页
   ·融合蛋白的表达及纯化第45-48页
  实验2 CED-2(1-174)表达纯化第48-52页
   1 材料与方法第48-49页
   ·载体构建主要过程第48页
   ·CED-2(1-174)表达纯化第48-49页
   2 结果与讨论第49-52页
  实验3 CED-5片段的表达纯化第52-57页
   1 材料和方法第54-57页
   ·CED-5(1715-1781)克隆载体构建主要过程第54页
   ·CED-5(1715-1781)-pET21b的表达纯化第54-57页
  实验4 CED-2、CED-5片段的共表达及共纯化第57-61页
   1 材料和方法第57-58页
   ·pET28a-CED2与pGEX6p-CED5(1715-1781)的共表达第57页
   ·SuperdexG-200分子筛凝胶过滤层析第57-58页
   2 结果与讨论第58-61页
  实验5 CED-2、CED-5片段的体外Pull-down第61-64页
   1 材料和方法第61-63页
   ·CED-5(1759-1775)-pGEX6P和CED-5(1716-1735)-pGEX-6P克隆载体构建第61-62页
   ·CED-5(1759-1775)-pGEX-6P和CED-5(1716-1735)-pGEX-6P表达第62-63页
   2 结果与讨论第63-64页
  实验6 CED-2(1-174)和CED-5(1715-1781)混合纯化第64-67页
   1 材料和方法第64页
   ·CED-2(1-174)纯化第64页
   ·CED-5(1715-1781)纯化第64页
   ·CED-2(1-174)和CED-5(1715-1781)混合后凝胶过滤第64页
   2 结果与讨论第64-67页
  本章小结第67-68页
 第二章 蛋白晶体的筛选与优化第68-77页
  实验1 晶体的筛选第69-72页
   1 材料和方法第69-70页
   ·CED-2(1-174)蛋白晶体生长条件的筛选第69-70页
   ·CED-2全长蛋白晶体生长条件的筛选第70页
   2 实验结果第70-72页
   ·CED-2(1-174)蛋白用气体悬滴法筛选晶体生长条件第70-71页
   ·CED-2全长用气体悬滴法筛选晶体生长条件第71-72页
  实验2 晶体的优化第72-76页
   1 材料和方法第72-73页
   ·pH梯度优化第72页
   ·沉淀剂种类与浓度梯度优化第72-73页
   2 优化结果第73-76页
  本章小结与讨论第76-77页
实验主要结论第77-78页
参考文献第78-83页
致谢第83页

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