| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 D-氨基酸的发现 | 第10-11页 |
| 1.1.1 D-氨基酸在微生物中的发现 | 第10页 |
| 1.1.2 D-氨基酸在植物中的发现 | 第10页 |
| 1.1.3 D-氨基酸在食物中的发现 | 第10-11页 |
| 1.2 D-氨基酸的生理功能 | 第11页 |
| 1.3 D-缬氨酸的简介 | 第11-12页 |
| 1.3.1 D-缬氨酸的分子结构 | 第11-12页 |
| 1.3.2 D-缬氨酸的理化性质 | 第12页 |
| 1.4 D-缬氨酸的应用 | 第12-14页 |
| 1.4.1 D-缬氨酸在农药方面的应用 | 第12-13页 |
| 1.4.2 D-缬氨酸在兽药方面的应用 | 第13页 |
| 1.4.3 D-缬氨酸在医药方面的应用 | 第13页 |
| 1.4.4 D-缬氨酸在细胞培养方面的应用 | 第13-14页 |
| 1.5 D-缬氨酸的生产方法 | 第14-15页 |
| 1.5.1 立体不对称合成法 | 第14页 |
| 1.5.2 诱导结晶法 | 第14页 |
| 1.5.3 化学拆分法 | 第14-15页 |
| 1.5.4 微生物法 | 第15页 |
| 1.6 微生物法制备D-缬氨酸的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.7 论文的研究意义与创新之处 | 第16页 |
| 1.8 论文的研究内容 | 第16-17页 |
| 第二章 DL-缬氨酸不对称降解菌株的选育 | 第17-32页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第17-19页 |
| 2.2.1 菌种 | 第17页 |
| 2.2.2 材料 | 第17-18页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第18页 |
| 2.2.4 培养基 | 第18-19页 |
| 2.3 方法 | 第19-24页 |
| 2.3.1 高效液相色谱法测定缬氨酸的含量及L-缬氨酸标准曲线的绘制 | 第19页 |
| 2.3.2 菌株初始特性的研究 | 第19-20页 |
| 2.3.3 稀释涂布法 | 第20页 |
| 2.3.4 菌株的驯化 | 第20页 |
| 2.3.5 梯度平板法 | 第20-21页 |
| 2.3.6 菌株生长曲线的绘制 | 第21页 |
| 2.3.7 菌株的选育方法 | 第21-24页 |
| 2.3.7.1 原始菌株降解L-缬氨酸 | 第21页 |
| 2.3.7.2 驯化菌株降解L-缬氨酸 | 第21页 |
| 2.3.7.3 梯度平板菌株降解L-缬氨酸 | 第21-22页 |
| 2.3.7.4 紫外诱变菌株降解L-缬氨酸 | 第22页 |
| 2.3.7.5 DES诱变菌株降解L-缬氨酸 | 第22-23页 |
| 2.3.7.6 复合诱变菌株降解L-缬氨酸 | 第23页 |
| 2.3.7.7 DES诱变菌株的遗传稳定性的测定 | 第23-24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2.4.1 L-缬氨酸的标准曲线 | 第24页 |
| 2.4.2 菌株初始特性的研究结果 | 第24-25页 |
| 2.4.3 菌株的生长曲线 | 第25-26页 |
| 2.4.4 菌株的选育结果 | 第26-31页 |
| 2.4.4.1 原始菌株降解L-缬氨酸结果 | 第26页 |
| 2.4.4.2 驯化菌株降解L-缬氨酸结果 | 第26页 |
| 2.4.4.3 梯度平板原始菌株降解L-缬氨酸结果 | 第26-27页 |
| 2.4.4.4 梯度平板驯化菌株降解L-缬氨酸结果 | 第27页 |
| 2.4.4.5 紫外诱变菌株降解L-缬氨酸结果 | 第27-28页 |
| 2.4.4.6 DES诱变菌株降解L-缬氨酸结果 | 第28-29页 |
| 2.4.4.7 复合诱变菌株降解L-缬氨酸结果 | 第29-30页 |
| 2.4.4.8 DES诱变菌株遗传稳定性的测定情况 | 第30-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 同步培养降解法工艺的研究 | 第32-43页 |
| 3.1 前言 | 第32页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第32-34页 |
| 3.2.1 菌种 | 第32页 |
| 3.2.2 材料 | 第32-33页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第33页 |
| 3.2.4 培养基 | 第33-34页 |
| 3.3 方法 | 第34-36页 |
| 3.3.1 菌体培养 | 第34页 |
| 3.3.2 同步培养转化法降解工艺的研究 | 第34-36页 |
| 3.3.2.1 培养基组分对降解工艺的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.2.2 培养条件对降解工艺的影响 | 第35页 |
| 3.3.2.3 补料对降解工艺的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.4.1 培养基组分对降解工艺的影响结果 | 第36-38页 |
| 3.4.1.1 碳源种类对降解工艺的影响结果 | 第36-37页 |
| 3.4.1.2 单一氮源种类对降解工艺的影响结果 | 第37页 |
| 3.4.1.3 复合氮源对降解工艺的影响结果 | 第37-38页 |
| 3.4.2 培养条件对降解工艺的影响结果 | 第38-41页 |
| 3.4.2.1 发酵液初始pH值对降解工艺的影响结果 | 第38-39页 |
| 3.4.2.2 发酵液装液量对降解工艺的影响结果 | 第39-40页 |
| 3.4.2.3 转速对降解工艺的影响结果 | 第40-41页 |
| 3.4.2.4 温度对降解工艺的影响结果 | 第41页 |
| 3.4.3 补料对降解工艺的影响结果 | 第41-42页 |
| 3.5 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 静息细胞降解法制备D-缬氨酸的研究 | 第43-58页 |
| 4.1 前言 | 第43页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第43-45页 |
| 4.2.1 菌种 | 第43页 |
| 4.2.2 材料 | 第43-44页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第44页 |
| 4.2.4 培养基 | 第44-45页 |
| 4.3 方法 | 第45-48页 |
| 4.3.1 菌体培养 | 第45页 |
| 4.3.2 摇瓶条件下对降解工艺的研究 | 第45-46页 |
| 4.3.2.1 反应液初始pH值对降解工艺的影响 | 第45页 |
| 4.3.2.2 装液量对降解工艺的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.2.3 转速对降解工艺的影响 | 第46页 |
| 4.3.2.4 温度对降解工艺的影响 | 第46页 |
| 4.3.2.5 菌体量对降解工艺的影响 | 第46页 |
| 4.3.2.6 不同底物浓度下的降解反应 | 第46页 |
| 4.3.3 发酵罐条件下对降解工艺的研究 | 第46-47页 |
| 4.3.4 发酵罐条件下补料对降解工艺的影响研究 | 第47页 |
| 4.3.5 D-缬氨酸制备及分离纯化 | 第47-48页 |
| 4.3.5.1 菌体不对称降解DL-缬氨酸的反应 | 第47页 |
| 4.3.5.2 D-缬氨酸的分离纯化 | 第47-48页 |
| 4.3.5.3 分析方法 | 第48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-57页 |
| 4.4.1 摇瓶条件下对降解工艺的研究结果 | 第48-54页 |
| 4.4.1.1 反应液pH值对降解工艺的影响 | 第48-50页 |
| 4.4.1.2 反应液装液量的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.1.3 转速的影响 | 第51页 |
| 4.4.1.4 温度对降解工艺的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.1.5 菌体量对降解工艺的影响 | 第52-53页 |
| 4.4.1.6 不同底物浓度下的降解结果 | 第53-54页 |
| 4.4.2 发酵罐条件下对降解工艺的研究结果 | 第54-55页 |
| 4.4.3 发酵罐条件下补料对降解工艺的影响研究结果 | 第55-56页 |
| 4.4.4 DL-缬氨酸不对称降解反应制备D-缬氨酸的结果 | 第56-57页 |
| 4.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 结论与建议 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
