| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-21页 |
| 研究现状、成果 | 第16-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-21页 |
| 一、高糖、高脂诱导糖尿病大鼠肾CD36表达 | 第21-26页 |
| 1.1 研究对象和主要试剂 | 第21页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第21页 |
| 1.1.2 主要试剂及仪器 | 第21页 |
| 1.1.3 主要抗体 | 第21页 |
| 1.2 研究方法 | 第21-23页 |
| 1.2.1 建立2型糖尿病合并高脂血症大鼠模型方法 | 第21页 |
| 1.2.2 标本的收集方法 | 第21-22页 |
| 1.2.3 肾组织病理学检查肾组织标本腊块制备方法 | 第22页 |
| 1.2.4 肾小管间质损伤评分标准 | 第22页 |
| 1.2.5 免疫组化检测方法 | 第22页 |
| 1.2.6 生化指标测定方法 | 第22-23页 |
| 1.2.7 图像采集方法 | 第23页 |
| 1.2.8 统计学处理方法 | 第23页 |
| 1.3 结果 | 第23-24页 |
| 1.3.1 肾脏病理一般表现 | 第23页 |
| 1.3.2 糖尿病大鼠组与对照组比较肾标本CD36表达 | 第23-24页 |
| 1.3.3 肾小管间质损伤半定量分析 | 第24页 |
| 1.4 讨论 | 第24-25页 |
| 1.4.1 动物模型的选择和建立 | 第24页 |
| 1.4.2 CD36作用概述 | 第24页 |
| 1.4.3 CD36与糖尿病肾间质纤维化之间的关联性 | 第24-25页 |
| 1.5 小结 | 第25-26页 |
| 二、O_xLDL对其肾小管细胞受体CD36及LOX1具有上调作用 | 第26-39页 |
| 2.1 对象和方法 | 第26-30页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第26页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 主要抗体 | 第26页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第26页 |
| 2.1.5 细胞培养方法 | 第26-27页 |
| 2.1.6 O_xLDL处理细胞方法 | 第27页 |
| 2.1.7 免疫印迹方法 | 第27页 |
| 2.1.8 RT-PCR实验方法-检测基因LOX-1 mRNA的表达 | 第27-30页 |
| 2.1.8.1 RT-PCR实验原理 | 第27页 |
| 2.1.8.2 RT-PCR主要试剂准备 | 第27-28页 |
| 2.1.8.3 RT-PCR主要仪器准备 | 第28页 |
| 2.1.8.4 RT-PCR主要实验步骤 | 第28-30页 |
| 2.2 结果 | 第30-34页 |
| 2.2.1 50mg/L浓度O_xLDL刺激NRK-52E细胞后CD36表达 | 第30-32页 |
| 2.2.2 不同浓度O_xLDL刺激NRK-52E细胞CD36的表达 | 第32-34页 |
| 2.2.3 OXLDL处理NRK-52E细胞后LOX1-mRNA的表达 | 第34页 |
| 2.3 讨论 | 第34-38页 |
| 2.3.1 高脂相关肾损害的机制概述 | 第34-35页 |
| 2.3.2 CD36在慢性间质损伤中的研究进展 | 第35-37页 |
| 2.3.3 LOX-1受体的作用机制研究进展概述 | 第37页 |
| 2.3.4 O_xLDL与肾小管损伤对其受体CD36、LOX-1的影响及其关系 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 三、O_xLDL对其肾小管细胞Nrf2蛋白水平的影响 | 第39-50页 |
| 3.1 对象和方法 | 第39-41页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第39页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第39页 |
| 3.1.3 主要抗体 | 第39页 |
| 3.1.4 主要实验仪器 | 第39页 |
| 3.1.5 细胞培养方法 | 第39-40页 |
| 3.1.6 O_xLDL处理细胞方法 | 第40页 |
| 3.1.7 血清饥饿处理NRK-52E细胞方法 | 第40页 |
| 3.1.8 核蛋白的提取方法 | 第40页 |
| 3.1.9 免疫印迹方法 | 第40-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-44页 |
| 3.2.1 O_xLDL处理后Nrf2总蛋白水平 | 第41-42页 |
| 3.2.2 O_xLDL处理后Nrf2在核内及胞浆内的蛋白水平 | 第42-44页 |
| 3.3 讨论 | 第44-49页 |
| 3.3.1 脂蛋白异常与氧化应激关系概述 | 第44-45页 |
| 3.3.2 Nrf2的作用概述 | 第45-47页 |
| 3.3.3 O_xLDL对Nrf2的影响及其机制探讨 | 第47-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 四、Keap1对CD36、LOX-1、E-cadherin蛋白表达影响 | 第50-66页 |
| 4.1 对象及方法 | 第50-54页 |
| 4.1.1 研究对象 | 第50页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第50页 |
| 4.1.3 主要抗体 | 第50页 |
| 4.1.4 主要实验仪器 | 第50-51页 |
| 4.1.5 细胞培养方法 | 第51页 |
| 4.1.6 OxLDL处理细胞方法 | 第51页 |
| 4.1.7 RT-PCR方法检测基因CD36 mRNA | 第51页 |
| 4.1.8 细胞转染试验方法 | 第51-54页 |
| 4.2 结果 | 第54-61页 |
| 4.2.1 Keap1过表达后再以O_xLDL处理细胞CD36蛋白表达 | 第54-55页 |
| 4.2.2 Keap1过表达后再以OXLDL处理细胞CD36 mRNA含量 | 第55-57页 |
| 4.2.3 Keap1过表达后再以OXLDL处理细胞LOX-1mRNA比较 | 第57-60页 |
| 4.2.4 Keap1处理后细胞E-cadherin蛋白表达 | 第60-61页 |
| 4.3 讨论 | 第61-65页 |
| 4.3.1 Nrf2抑制剂Keap1的概述 | 第61页 |
| 4.3.2 O_xLDL的肾小管细胞受体CD36的调节机制概述 | 第61-62页 |
| 4.3.3 Nrf2抑制剂Keap1对CD36影响及调节机制 | 第62-64页 |
| 4.3.4 肾小管细胞纤维化标志分子E-cadherin概述 | 第64-65页 |
| 4.3.5 Nrf2抑制剂Keap1对肾小管细胞E-cadherin的影响 | 第65页 |
| 4.4 小结 | 第65-66页 |
| 五、O_xLDL及Keap1对NFκB蛋白表达影响 | 第66-73页 |
| 5.1 对象与方法 | 第66-67页 |
| 5.1.1 研究对象 | 第66页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第66页 |
| 5.1.3 主要抗体 | 第66页 |
| 5.1.4 主要实验仪器 | 第66页 |
| 5.1.5 细胞培养方法 | 第66页 |
| 5.1.6 细胞处理方法 | 第66-67页 |
| 5.1.7 免疫印迹方法 | 第67页 |
| 5.1.8 细胞转染方法 | 第67页 |
| 5.2 结果 | 第67-70页 |
| 5.2.1 OxLDL处理后的细胞中NF-κB蛋白表达 | 第67-68页 |
| 5.2.2 Nrf2抑制剂处理后的293T细胞中NF-κB蛋白 | 第68-70页 |
| 5.3 讨论 | 第70-72页 |
| 5.4 小结 | 第72-73页 |
| 全文结论 | 第73-75页 |
| 论文创新点 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-87页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第87-88页 |
| 综述 | 第88-115页 |
| 综述参考文献 | 第104-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
