| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第12-16页 |
| 第一章 Nrf2在NSCLC中的表达 | 第16-25页 |
| 前言 | 第16页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第16-18页 |
| 1.1.1 主要仪器 | 第16-17页 |
| 1.1.2 主要材料与试剂 | 第17-18页 |
| 1.2 实验方法 | 第18-23页 |
| 1.2.1 样本分析 | 第18-19页 |
| 1.2.2 免疫组织化学（IHC） | 第19页 |
| 1.2.3 细胞培养 | 第19-21页 |
| 1.2.4 免疫印记(Western blotting) | 第21-22页 |
| 1.2.5 统计学方法 | 第22-23页 |
| 1.3 实验结果 | 第23-24页 |
| 1.4 小结和讨论 | 第24-25页 |
| 第二章 NOX4对NSCLC细胞中Nrf2表达的影响 | 第25-34页 |
| 前言 | 第25页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂和耗材 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第26页 |
| 2.2.2 细胞转染 | 第26-27页 |
| 2.2.3 免疫印记(Western blotting) | 第27页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测mRNA的表达水平 | 第27-29页 |
| 2.2.5 ARE-萤光素酶报告基因测定 | 第29页 |
| 2.2.6 统计学方法 | 第29-30页 |
| 2.3 实验结果 | 第30-33页 |
| 2.3.1 NOX4对NSCLC细胞中Nrf2表达的影响 | 第30-32页 |
| 2.3.2 NOX4对NSCLC细胞中Nrf2活性的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第33-34页 |
| 第三章 探究NOX4调控NSCLC细胞中Nrf2表达的机制 | 第34-39页 |
| 前言 | 第34页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第34页 |
| 3.1.2 主要试剂和耗材 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第35页 |
| 3.2.2 免疫印记(Western blotting) | 第35页 |
| 3.2.3 ARE-萤光素酶报告基因测定 | 第35页 |
| 3.2.4 细胞外H_2O_2的测定 | 第35页 |
| 3.2.5 统计学方法 | 第35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-38页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 NOX4诱导的Nrf2对NSCLC细胞的影响 | 第39-48页 |
| 前言 | 第39页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第39-40页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第39页 |
| 4.1.2 主要试剂和耗材 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 4.2.1 细胞外H2O2的测定 | 第40页 |
| 4.2.2 MTT法检测细胞增殖 | 第40页 |
| 4.2.3 细胞凋亡检测 | 第40页 |
| 4.2.4 GSH和GSSG检测试剂盒 | 第40-41页 |
| 4.2.5 细胞集落形成实验 | 第41页 |
| 4.2.6 成瘤实验 | 第41页 |
| 4.2.7 组织包埋与切片 | 第41-42页 |
| 4.2.8 TUNEL染色 | 第42页 |
| 4.2.9 统计学方法 | 第42页 |
| 4.3 实验结果 | 第42-47页 |
| 4.3.1 Nrf2介导NOX4过表达的A549细胞中的氧化还原适应 | 第42-44页 |
| 4.3.2 Nrf2介导的氧化还原适应能够调控肿瘤细胞的增殖 | 第44-47页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第47-48页 |
| 第五章 结论与展望 | 第48-49页 |
| 5.1 结论 | 第48页 |
| 5.2 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 附录 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 主要英文缩略语索引 | 第58-60页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第60页 |
