中文摘要 | 第7-11页 |
Abstract | 第11-15页 |
英文缩略词表 | 第16-17页 |
引言 | 第17-21页 |
第一部分 活血通督汤对急性脊髓损伤后小胶质细胞P2X7受体介导炎症的调控作用研究 | 第21-61页 |
1 目的 | 第21页 |
2 材料 | 第21-24页 |
2.1 实验动物 | 第21页 |
2.2 药物 | 第21页 |
2.3 主要实验试剂 | 第21-23页 |
2.4 主要实验仪器 | 第23页 |
2.5 主要试剂配制 | 第23-24页 |
3 方法 | 第24-35页 |
3.1 动物分组及处理 | 第24-25页 |
3.2 急性脊髓损伤模型制备 | 第25页 |
3.3 取材 | 第25-26页 |
3.4 石蜡包埋 | 第26页 |
3.5 切片 | 第26页 |
3.6 实验检测技术 | 第26-34页 |
3.7 统计学分析 | 第34-35页 |
4 实验结果 | 第35-51页 |
4.1 尼氏染色观察脊髓神经元组织形态 | 第35-37页 |
4.2 透射电子显微镜观察髓鞘和神经元组织形态 | 第37-38页 |
4.3 高尔基染色观察树突和树突棘组织形态 | 第38-41页 |
4.4 激光共聚集检测P2X7R+/IBA1+细胞表达 | 第41-43页 |
4.5 Elsia检测炎性因子表达水平 | 第43-44页 |
4.6 Western blot检测P2X7R蛋白和Caspase1 (p20)蛋白表达情况 | 第44-46页 |
4.7 比色法检测Caspase1活性 | 第46-47页 |
4.8 qPCR检测P2X7R mRNA、IL-1β mRNA、IL-6 mRNA、IL-18 mRNA和TNF-α mRNA表达情况 | 第47-51页 |
5 讨论 | 第51-60页 |
5.1 急性脊髓损伤模型建立 | 第51-53页 |
5.2 脊髓损伤的中医学认识及中医药治疗 | 第53-55页 |
5.3 活血通督汤对小胶质细胞P2X7R介导炎症的作用 | 第55-59页 |
5.4 急性脊髓损伤早期治疗的重要性 | 第59-60页 |
6 小结 | 第60页 |
7 不足与展望 | 第60-61页 |
第二部分 活血通督汤对活化小胶质细胞P2X7受体介导神经炎症的作用机制研究 | 第61-85页 |
1 目的 | 第61页 |
2 材料 | 第61-64页 |
2.1 细胞 | 第61页 |
2.2 药物 | 第61页 |
2.3 主要实验试剂 | 第61-62页 |
2.4 主要实验仪器 | 第62-63页 |
2.5 主要试剂配制 | 第63-64页 |
3 方法 | 第64-72页 |
3.1 活血通督汤水提取液制备 | 第64页 |
3.2 细胞培养 | 第64页 |
3.3 细胞复苏 | 第64页 |
3.4 传代 | 第64-65页 |
3.5 MTT法筛选活血通督汤安全干预浓度范围 | 第65页 |
3.6 MTT法检测细胞活性 | 第65-66页 |
3.7 BV-2细胞的分组及处理 | 第66页 |
3.8 实验检测技术 | 第66-71页 |
3.9 统计学分析 | 第71-72页 |
4 实验结果 | 第72-81页 |
4.1 活血通督汤安全干预浓度范围 | 第72页 |
4.2 MTT法检测细胞活力 | 第72-73页 |
4.3 Elisa检测炎性因子表达水平 | 第73-75页 |
4.4 Western blot检测P2X7R蛋白和Caspase1 (p20)蛋白表达情况 | 第75-76页 |
4.5 比色法检测Caspase1活性 | 第76-77页 |
4.6 qPCR检测P2X7R mRNA、IL-1β mRNA、IL-6 mRNA、IL-18 mRNA和TNF-α mRNA表达情况 | 第77-81页 |
5 讨论 | 第81-84页 |
5.1 小胶质细胞在炎症中的重要作用 | 第81-82页 |
5.2 体外炎症细胞模型 | 第82-83页 |
5.3 活血通督汤对活化小胶质细胞P2X7R介导炎症的调控作用 | 第83-84页 |
6 小结 | 第84页 |
7 不足与展望 | 第84-85页 |
结论 | 第85-86页 |
参考文献 | 第86-95页 |
附录A | 第95-96页 |
附录B | 第96-97页 |
附录C | 第97-98页 |
文献综述 | 第98-107页 |
参考文献 | 第102-107页 |
致谢 | 第107-108页 |
作者简历 | 第108-109页 |