| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 符号说明 | 第15-17页 |
| 第一部分 大鼠呼吸机相关性肺损伤动物模型的建立 | 第17-24页 |
| 1.1 前言 | 第17页 |
| 1.2 材料和方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 材料 | 第17-18页 |
| 1.2.2 实验动物分组 | 第18页 |
| 1.2.3 建立VILI大鼠模型及标本采集 | 第18页 |
| 1.2.4 石蜡切片苏木精-伊红(HE)染色法肺组织病理学检查 | 第18-19页 |
| 1.2.5 肺组织湿/干重测定 | 第19页 |
| 1.2.6 统计分析 | 第19页 |
| 1.3 结果 | 第19-20页 |
| 1.3.1 不同组肺组织病理学变化 | 第19-20页 |
| 1.3.2 不同组肺组织W/D比较 | 第20页 |
| 1.4 讨论 | 第20-23页 |
| 附图 | 第23-24页 |
| 第二部分 TRPA1介导的神经源性炎症反应通路在VILI损伤机制中的研究 | 第24-38页 |
| 2.1 前言 | 第24-26页 |
| 2.2 材料与方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 材料 | 第26页 |
| 2.2.2 实验动物分组 | 第26页 |
| 2.2.3 建立VILI大鼠模型及标本采集 | 第26-27页 |
| 2.2.4 指标测定 | 第27页 |
| 2.2.5 RT-PCR检测肺组织TRPA1 mRNA的表达水平 | 第27-29页 |
| 2.2.6 免疫组化结果 | 第29页 |
| 2.2.7 统计分析 | 第29-30页 |
| 2.3 结果 | 第30-31页 |
| 2.3.1 各组肺组织指标比较 | 第30页 |
| 2.3.2 各肺组织TNF-α与IL-8的检测 | 第30-31页 |
| 2.3.3 各肺组织SP的检测 | 第31页 |
| 2.3.4 RT-PCR检测肺组织TRPA1 mRNA的表达水平 | 第31页 |
| 2.3.5 RT-PCR检测肺组织TRPA1 mRNA的表达水平 | 第31页 |
| 2.3.6 各组肺组织免疫组化结果比较 | 第31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-36页 |
| 附图 | 第36-38页 |
| 第三部分 拮抗剂对TRPA1介导的神经源性炎症反应参与的VILI的影响 | 第38-48页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 材料与方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料 | 第39页 |
| 3.2.2 实验动物分组 | 第39-40页 |
| 3.2.3 建立VILI大鼠模型及标本采集 | 第40页 |
| 3.2.4 指标测定 | 第40页 |
| 3.2.5 RT-PCR检测肺组织TRPA1 mRNA | 第40页 |
| 3.2.6 统计分析 | 第40-41页 |
| 3.3 结果 | 第41-42页 |
| 3.3.1 各组肺组织指标比较 | 第41-42页 |
| 3.3.2 各肺组织TNF-α与IL-8的检测 | 第42页 |
| 3.3.3 各肺组织SP的检测 | 第42页 |
| 3.3.4 RT-PCR检测肺组织TRPA1 mRNA的表达 | 第42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-46页 |
| 附图 | 第46-48页 |
| 综述 | 第48-55页 |
| 1 机械通气性肺损伤 | 第48-51页 |
| 1.1 机械通气性肺损伤简介 | 第48-49页 |
| 1.2 急性肺损伤发病机制的研究进展 | 第49-51页 |
| 2 神经源性炎症反应 | 第51-52页 |
| 2.1 神经源性炎症反应简介 | 第51页 |
| 2.2 参与神经源性炎症反应的肽类物质 | 第51-52页 |
| 3 瞬时受体电位通道A1 | 第52-53页 |
| 4 TRPA1与机械通气性肺损伤 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 英文论文 | 第62-77页 |
| REFERENCES | 第71-77页 |
| 附件 | 第77页 |
