| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 药物运输纳米载体的研究进展 | 第13-19页 |
| 1.1.1 前言 | 第13-14页 |
| 1.1.2 纳米载体（纳米粒子）的分类和选择 | 第14-15页 |
| 1.1.3 壳聚糖纳米载体材料的合成方法 | 第15页 |
| 1.1.3.1 化学-交联法 | 第15页 |
| 1.1.3.2 离子-交联法 | 第15页 |
| 1.1.4 壳聚糖药物载体研究现状 | 第15-16页 |
| 1.1.5 肿瘤靶向运输 | 第16-17页 |
| 1.1.6 基因治疗 | 第17-19页 |
| 1.1.6.1 血管内皮细胞生长因子（VEGF）与肿瘤的相关性研究 | 第18-19页 |
| 1.2 荧光探针的研究和实时成像应用 | 第19-21页 |
| 1.2.1 荧光染料 | 第19-20页 |
| 1.2.2 碳材料量子点 | 第20-21页 |
| 1.3 本课题的实验思路 | 第21-22页 |
| 第二章 水溶性碳量子点的合成与表征 | 第22-30页 |
| 2.0 引言 | 第22页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要溶剂配置 | 第23页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 壳聚糖碳量子点的制备 | 第23-25页 |
| 2.2.1.1 微波加热法制备壳聚糖碳量子点 | 第23-24页 |
| 2.2.1.2 PEG4000表面钝化壳聚糖碳量子合成 | 第24页 |
| 2.2.1.3 功能化碳量子点C-dots的合成 | 第24页 |
| 2.2.1.4 壳聚糖C-QDs与C-Dots的光学性质 | 第24-25页 |
| 2.2.1.5 壳聚糖C-QDs与C-Dots荧光量子产率测量 | 第25页 |
| 2.2.2 碳量子点荧光的溶剂效应 | 第25页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第25-29页 |
| 2.3.1.1 C-QDs与C-Dots紫外与荧光光谱表征 | 第25-26页 |
| 2.3.1.2 C-Dots光成像与光稳定性检测 | 第26-27页 |
| 2.3.1.3 碳量子点荧光的溶剂效应 | 第27-29页 |
| 2.4 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 功能化壳聚糖载体的修饰与表征 | 第30-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第30页 |
| 3.1.2 主要溶液配置 | 第30页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 3.2.1 叶酸活性酯的制备 | 第31页 |
| 3.2.2 叶酸修饰壳聚糖的制备 | 第31-32页 |
| 3.2.3 异硫氰酸荧光素标记的叶酸壳聚糖的制备 | 第32页 |
| 3.2.4 靶向荧光型FA-CS-FITC(DOX/C-dots)纳米粒子的制备 | 第32页 |
| 3.2.5 场发射扫描电子显微镜检测 | 第32-33页 |
| 3.2.6 傅里叶红外光谱检测 | 第33页 |
| 3.2.7 紫外与荧光分光光度计定性分析 | 第33页 |
| 3.2.8 阿霉素负载效率实验 | 第33-34页 |
| 3.2.9 药物体外释放实验 | 第34页 |
| 3.2.10 稳定性实验 | 第34页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第34-41页 |
| 3.3.1 靶向荧光型FA-CS-FITC(DOX/C-dots)纳米粒子形貌 | 第34-37页 |
| 3.3.2 叶酸与异硫氰酸荧光素修饰的壳聚糖表征 | 第37-41页 |
| 3.3.2.1 叶酸、异硫氰酸荧光素修饰的紫外吸收与傅里叶红外光谱 | 第37-38页 |
| 3.3.2.2 叶酸异硫氰酸荧光素共修饰的壳聚糖荧光光谱分析 | 第38-39页 |
| 3.3.2.3 功能化复合粒子载药量和包封率研究和体外释放实验 | 第39-40页 |
| 3.3.2.4 稳定性实验 | 第40-41页 |
| 3.4 小结 | 第41-42页 |
| 第四章 叶酸修饰的壳聚糖共载阿霉素和基因联合抗肿瘤及细胞内成像研究 | 第42-58页 |
| 4.1 引言 | 第42页 |
| 4.2 实验材料 | 第42-44页 |
| 4.2.1 细胞 | 第42页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第42-43页 |
| 4.2.3 主要仪器和设备 | 第43页 |
| 4.2.4 主要溶液配制 | 第43-44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-49页 |
| 4.3.1 VEGF shRNA的提取及浓度测定 | 第44-45页 |
| 4.3.2 基因复合物的制备与吸附实验 | 第45页 |
| 4.3.3 HeLa细胞的培养 | 第45-46页 |
| 4.3.3.1 细胞的复苏 | 第45-46页 |
| 4.3.3.2 细胞的传代与接板 | 第46页 |
| 4.3.3.3 细胞的冻存 | 第46页 |
| 4.3.4 FA-CS-FITC与FA-CS-FITC(C-Dots)载体细胞毒性实验 | 第46-47页 |
| 4.3.5 复合粒子的细胞内吞实验 | 第47页 |
| 4.3.6 基因药物复合粒子的抗肿瘤协同治疗检测 | 第47-48页 |
| 4.3.7 基因药物复合粒子的促肿瘤细胞凋亡检测 | 第48页 |
| 4.3.8 VEGF基因表达检测 | 第48页 |
| 4.3.9 复合粒子靶向与竞争抑制实验 | 第48-49页 |
| 4.3.10复合粒子模式成像 | 第49页 |
| 4.4 实验结果 | 第49-57页 |
| 4.4.1 FA-CS-FITC(DOX/C-dots)/VEGF shRNA NPs形貌表征与电位 | 第49-50页 |
| 4.4.2 复合粒子对VEGF shRNA吸附与保护 | 第50-51页 |
| 4.4.3 FA-CS-FITC与FA-CS-FITC(C-Dots)载体细胞毒性检测 | 第51-52页 |
| 4.4.4 复合粒子的内吞情况检测 | 第52页 |
| 4.4.5 复合粒子靶向性与竞争抑制实验 | 第52-55页 |
| 4.4.6 复合粒子协同抗肿瘤研究 | 第55-56页 |
| 4.4.7 复合粒子模式成像图 | 第56-57页 |
| 4.5 小结 | 第57-58页 |
| 第五章 全文总结 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 攻硕期间的研究成果 | 第64-65页 |
