| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 缩略词(Abbreviations) | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-25页 |
| 1.1 植物GTP结合蛋白的种类和特性 | 第11-15页 |
| 1.2 植物G蛋白的调控模式 | 第15-16页 |
| 1.3 植物G蛋白的功能与作用机制 | 第16-20页 |
| 1.4 植物低温胁迫与盐胁迫信号途径研究进展 | 第20-24页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-35页 |
| 2.1 实验材料和培养条件 | 第25-26页 |
| 2.1.1 黄瓜培养与处理条件 | 第25-26页 |
| 2.1.2 拟南芥培养条件 | 第26页 |
| 2.2 黄瓜Gγ基因家族全基因组鉴定及序列获取 | 第26-27页 |
| 2.3 过表达载体与反义载体构建 | 第27页 |
| 2.4 拟南芥转基因方法 | 第27-28页 |
| 2.5 黄瓜转基因方法 | 第28-29页 |
| 2.6 拟南芥低温存活率测定方法 | 第29页 |
| 2.7 黄瓜冷害指数测定方法 | 第29页 |
| 2.8 抗氧化酶活性测定方法 | 第29-30页 |
| 2.9 活性氧测定方法 | 第30-31页 |
| 2.10 MDA含量测定方法 | 第31页 |
| 2.11 活性氧的NBT和DAB染色法检测 | 第31-32页 |
| 2.12 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第32页 |
| 2.13 数据分析 | 第32-35页 |
| 3 试验结果 | 第35-52页 |
| 3.1 黄瓜C型Gγ基因对生物胁迫与非生物胁迫的响应 | 第35-42页 |
| 3.1.1 黄瓜Gγ基因的确定及生物信息学的分析 | 第35页 |
| 3.1.2 Gγ基因在黄瓜不同组织中的表达情况 | 第35-36页 |
| 3.1.3 黄瓜Gγ基因转录本对低温胁迫的响应 | 第36页 |
| 3.1.4 黄瓜Gγ基因转录本对盐胁迫的响应 | 第36-40页 |
| 3.1.5 接种白粉病菌对黄瓜Gγ基因转录水平的影响 | 第40页 |
| 3.1.6 黄瓜Gγ基因转录本对氧化胁迫的响应 | 第40-42页 |
| 3.2 黄瓜C型Gγ CsGG3.1-2参与盐胁迫响应的调控 | 第42-45页 |
| 3.2.1 超表达CsGG3.1-2增强了拟南芥耐盐性 | 第42-43页 |
| 3.2.2 CsGG3.1-2抑制表达对黄瓜耐盐性的影响 | 第43-45页 |
| 3.3 黄瓜C型Gγ CsGG3.2对黄瓜低温响应的调控 | 第45-52页 |
| 3.3.1 过表达CsGG3.2提高了黄瓜幼苗的低温耐性 | 第45-47页 |
| 3.3.2 过表达CsGG3.2提高了转基因黄瓜的CBF和COR基因表达水平 | 第47-50页 |
| 3.3.3 过表达CsGG3.2提高了转基因黄瓜在低温下的抗氧化能力 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-57页 |
| 4.1 CsGG3.1-2对盐响应的调控 | 第52-54页 |
| 4.2 CsGG3.2对低温响应的调控 | 第54-57页 |
| 5 结论 | 第57-59页 |
| 5.1 结论 | 第57-58页 |
| 5.2 下一步研究计划 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-70页 |
| 致谢 | 第70-73页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文 | 第73-74页 |
| 博士后期间发表的学术论文 | 第74-75页 |
| 个人简历 | 第75-76页 |
| 通信地址 | 第76页 |
