| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 文献回顾 | 第15-25页 |
| 1 山茱萸概述 | 第15-17页 |
| 1.1 植物形态 | 第15页 |
| 1.2 产地及采制 | 第15-16页 |
| 1.3 性状 | 第16页 |
| 1.4 本草文献 | 第16页 |
| 1.5 性能概要 | 第16-17页 |
| 1.6 功能主治 | 第17页 |
| 1.7 临床配伍应用 | 第17页 |
| 2 化学成分 | 第17-21页 |
| 2.1 环烯醚萜 | 第17-18页 |
| 2.2 三萜 | 第18-19页 |
| 2.3 鞣质 | 第19-20页 |
| 2.4 黄酮 | 第20页 |
| 2.5 有机酸 | 第20-21页 |
| 2.6 其他 | 第21页 |
| 3 生物活性 | 第21-24页 |
| 3.1 神经保护作用 | 第21-22页 |
| 3.2 心血管系统作用 | 第22-23页 |
| 3.3 对糖尿病及其并发症的作用 | 第23页 |
| 3.4 抗炎 | 第23-24页 |
| 3.5 其他 | 第24页 |
| 4 本章小结 | 第24-25页 |
| 第二章 山茱萸化学成分的分离及鉴定 | 第25-65页 |
| 一 引言 | 第25页 |
| 二 山茱萸化学成分的分离鉴定 | 第25-63页 |
| 1 逆流色谱简介 | 第25-28页 |
| 1.1 溶剂体系 | 第26-27页 |
| 1.2 洗脱模式 | 第27-28页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第28-30页 |
| 2.1 原材料 | 第28页 |
| 2.2 试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 仪器 | 第29-30页 |
| 3 逆流色谱法分离山茱萸中化学成分 | 第30-36页 |
| 3.1 两相溶剂体系和样品溶液的配置 | 第30-31页 |
| 3.2 分配系数的测定 | 第31-32页 |
| 3.3 逆流色谱分离过程 | 第32-36页 |
| 4 其他方法分离山茱萸中化学成分 | 第36-39页 |
| 4.1 反相ODS硅胶柱色谱法 | 第37页 |
| 4.2 制备型液相色谱法 | 第37页 |
| 4.3 制备型薄层色谱法 | 第37-39页 |
| 5 分离产物的纯度及结构鉴定 | 第39页 |
| 6 讨论 | 第39-47页 |
| 6.1 提取离子分析获取峰面积 | 第39-42页 |
| 6.2 两相溶剂体系的选择 | 第42-44页 |
| 6.3 其他分离条件的优化 | 第44-47页 |
| 7 分离产物的波谱数据 | 第47-63页 |
| 三 本章小结 | 第63-65页 |
| 第三章 山茱萸成分分析方法的建立 | 第65-97页 |
| 一 引言 | 第65-66页 |
| 二 高效毛细管电泳法定量分析山茱萸中8种环烯醚萜苷 | 第66-80页 |
| 1 高效毛细管电泳简介 | 第66-67页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| 2.1 材料 | 第67-68页 |
| 2.2 试剂 | 第68页 |
| 2.3 仪器 | 第68页 |
| 3 溶液配置 | 第68-69页 |
| 3.1 对照品溶液的配置 | 第68-69页 |
| 3.2 供试液的配置 | 第69页 |
| 4 测定方法 | 第69-73页 |
| 4.1 电泳条件 | 第69-70页 |
| 4.2 高效毛细管电泳方法学考察 | 第70-73页 |
| 5 样品测定 | 第73-76页 |
| 6 讨论-电泳条件的优选 | 第76-80页 |
| 6.1 pH值和缓冲体系 | 第76-77页 |
| 6.2 缓冲液浓度 | 第77-78页 |
| 6.3 有机改性剂 | 第78-79页 |
| 6.4 电泳电压 | 第79页 |
| 6.5 电泳温度 | 第79-80页 |
| 6.6 进样条件 | 第80页 |
| 7 小结 | 第80页 |
| 三 超高效液相色谱-串联质谱联用法定量分析山茱萸中8种环烯醚萜苷 | 第80-89页 |
| 1 超高效液相色谱-串联质谱联用简介 | 第80-81页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第81-82页 |
| 2.1 材料 | 第81页 |
| 2.2 试剂 | 第81-82页 |
| 2.3 仪器 | 第82页 |
| 3 溶液配置 | 第82-83页 |
| 3.1 对照品溶液的配置 | 第82页 |
| 3.2 供试液的配置 | 第82-83页 |
| 4 测定方法 | 第83-87页 |
| 4.1 超高效液相色谱-串联质谱联用分析条件 | 第83-84页 |
| 4.2 液质联用分析的方法学考察 | 第84-87页 |
| 5 样品测定 | 第87-88页 |
| 6 讨论：串联质谱多反应检测条件的优选 | 第88-89页 |
| 7 小结 | 第89页 |
| 四 山茱萸超高效液相色谱指纹图谱的建立 | 第89-95页 |
| 1 超高效液相色谱指纹图谱简介 | 第89-90页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第90页 |
| 3 溶液配置 | 第90页 |
| 4 测定方法 | 第90-95页 |
| 4.1 超高效液相色谱分析条件 | 第90页 |
| 4.2 超高效液相色谱指纹图谱的方法学考察 | 第90-91页 |
| 4.3 山茱萸指纹图谱的建立 | 第91-92页 |
| 4.4 不同批次山茱萸样品的相似度分析 | 第92-94页 |
| 4.5 分级聚类分析 | 第94-95页 |
| 5 讨论：供试液提取方法和检测波长的优选 | 第95页 |
| 6 小结 | 第95页 |
| 五 本章小结 | 第95-97页 |
| 第四章 山茱萸萜类成分的活性研究 | 第97-136页 |
| 一 引言 | 第97页 |
| 二 山茱萸萜类成分对神经胶质瘤细胞的抑制作用 | 第97-104页 |
| 1 神经胶质瘤简介 | 第98页 |
| 2 实验材料 | 第98-100页 |
| 2.1 试药 | 第98-100页 |
| 2.2 细胞 | 第100页 |
| 2.3 试剂 | 第100页 |
| 3 山茱萸萜类成分干预下的神经胶质瘤细胞存活率实验 | 第100-101页 |
| 4 山茱萸萜类成分神经胶质瘤的抑制作用结果 | 第101-103页 |
| 5 小结 | 第103-104页 |
| 三 山茱萸环烯醚萜苷抗血栓作用 | 第104-135页 |
| 1 血栓简介 | 第104-111页 |
| 1.1 血栓形成 | 第104-105页 |
| 1.2 诱发血栓形成的因素 | 第105-107页 |
| 1.3 抗血栓的作用位点及药物进展 | 第107-111页 |
| 2 实验材料与动物 | 第111-113页 |
| 2.1 试药 | 第111页 |
| 2.2 材料及仪器 | 第111-112页 |
| 2.3 实验动物 | 第112-113页 |
| 3 实验方法 | 第113-116页 |
| 3.1 大鼠血栓前状态模型的建立、分组及给药 | 第113页 |
| 3.2 电刺激颈动脉诱发血栓生成实验 | 第113-114页 |
| 3.3 组织切片的制备及病理学评估 | 第114页 |
| 3.4 凝血时间和出血时间的测定 | 第114页 |
| 3.5 采血 | 第114页 |
| 3.6 血小板计数 | 第114页 |
| 3.7 血浆抗凝实验 | 第114-115页 |
| 3.8 血液流变学检查 | 第115页 |
| 3.9 血清TXA_2、PGI_2和Serotonin的含量测定 | 第115页 |
| 3.10 血清TFPI和PAP的含量测定 | 第115-116页 |
| 4 实验结果 | 第116-130页 |
| 4.1 大鼠血栓前状态造模成功指标考察 | 第116-117页 |
| 4.2 山茱萸总苷和莫诺苷对血栓前状态模型大鼠电刺激颈动脉血栓生成的影响 | 第117-120页 |
| 4.3 山茱萸总苷和莫诺苷对血栓前状态模型大鼠凝血时间和出血时间的影响 | 第120-121页 |
| 4.4 山茱萸总苷和莫诺苷对血栓前状态模型大鼠血小板数的影响 | 第121-122页 |
| 4.5 山茱萸总苷和莫诺苷对血栓前状态模型大鼠血凝指标的影响 | 第122-124页 |
| 4.6 山茱萸总苷和莫诺苷对血栓前状态模型大鼠血液流变学的影响 | 第124-125页 |
| 4.7 山茱萸总苷和莫诺苷对大鼠血清TXA2、PGI2、Serotonin、TFPI和PAP的影响 | 第125-130页 |
| 5 讨论：血栓生成实验方法的选择 | 第130-134页 |
| 5.1 大鼠血栓前状态模型与电刺激诱发血栓生成方法的结合 | 第130页 |
| 5.2 血栓前状态造模方法的选择及原理 | 第130-132页 |
| 5.3 血栓前状态造模方法的改进 | 第132-133页 |
| 5.4 大鼠性别和体重对电刺激颈动脉诱发血栓生成实验的影响 | 第133-134页 |
| 6 小结 | 第134-135页 |
| 四 本章小结 | 第135-136页 |
| 结论 | 第136-137页 |
| 创新性 | 第137-138页 |
| 参考文献 | 第138-151页 |
| 攻读博士学位期间取得的科研成果 | 第151-154页 |
| 致谢 | 第154页 |
