| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 第一章 引言 | 第20-34页 |
| 1 WSSV 简介 | 第20-22页 |
| 2 宿主自身免疫机制及免疫调节相关信号转导通路 | 第22-23页 |
| 3 病毒对宿主信号转导通路的利用 | 第23-24页 |
| 4 分子标记辅助育种 | 第24-26页 |
| 5 SNP 标记 | 第26-28页 |
| 6 候选基因分析 | 第28-29页 |
| 7 本研究的立论依据、目的及意义 | 第29-34页 |
| 第二章 中国对虾 MEK 基因克隆、表达及 SNP 分析 | 第34-61页 |
| 1 材料与方法 | 第34-48页 |
| 1.1 材料 | 第34-36页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第34-35页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第35页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第35-36页 |
| 1.2 方法 | 第36-48页 |
| 1.2.1 DNA 提取 | 第36-37页 |
| 1.2.2 病毒悬液和毒饵制备 | 第37-38页 |
| 1.2.3 WSSV 攻毒实验 | 第38页 |
| 1.2.3.1 注射法 WSSV 攻毒实验 | 第38页 |
| 1.2.3.2 喂食法 WSSV 攻毒实验 | 第38页 |
| 1.2.4 RNA 提取 | 第38-39页 |
| 1.2.5 FcMEK cDNA 克隆及表达分析 | 第39-45页 |
| 1.2.6 SNP 开发及抗 WSSV 关联分析 | 第45-48页 |
| 2 结果 | 第48-59页 |
| 2.1 FcMEK cDNA 序列与编码氨基酸序列分析 | 第48-53页 |
| 2.2 正常中国对虾不同组织内 FcMEK mRNA 转录水平 | 第53-54页 |
| 2.3 感染 WSSV 后中国对虾不同组织内 FcMEK mRNA 转录水平 | 第54-56页 |
| 2.4 中国对虾 FcMEK SNP 标记筛选 | 第56-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 第三章 中国对虾 ERK 基因克隆、表达及 SNP 分析 | 第61-82页 |
| 1 材料与方法 | 第62-68页 |
| 1.1 材料 | 第62页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第62页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第62页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第62页 |
| 1.2 方法 | 第62-68页 |
| 1.2.1 DNA 提取 | 第62-63页 |
| 1.2.2 病毒悬液和毒饵制备 | 第63页 |
| 1.2.3 WSSV 攻毒实验 | 第63页 |
| 1.2.4 RNA 提取 | 第63页 |
| 1.2.5 FcERK cDNA 克隆及表达分析 | 第63-66页 |
| 1.2.6 SNP 开发及抗 WSSV 关联分析 | 第66-68页 |
| 2 结果 | 第68-80页 |
| 2.1 FcERK cDNA 序列与编码氨基酸序列分析 | 第68-73页 |
| 2.2 正常中国对虾不同组织内 FcERK mRNA 转录水平 | 第73-74页 |
| 2.3 感染 WSSV 后中国对虾不同组织内 FcERK mRNA 转录水平 | 第74-76页 |
| 2.4 感染 WSSV 后中国对虾不同组织内 FcERK 蛋白水平 | 第76-77页 |
| 2.5 中国对虾 FcERK SNP 标记筛选 | 第77-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| 第四章 感染中国对虾的 WSSV 复制特点及抑制宿主 MEK/ERK 通路对于 WSSV复制的影响 | 第82-91页 |
| 1 材料与方法 | 第83-86页 |
| 1.1 材料 | 第83-84页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第83页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第83页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第83-84页 |
| 1.2 方法 | 第84-86页 |
| 1.2.1 毒饵、病毒悬液及含 U0126 的病毒悬液制备 | 第84页 |
| 1.2.2 喂食法 WSSV 攻毒实验 | 第84页 |
| 1.2.3 注射法 WSSV 攻毒实验 | 第84-85页 |
| 1.2.4 DNA 提取 | 第85页 |
| 1.2.5 WSSV 含量检测 | 第85页 |
| 1.2.6 数据统计、分析 | 第85-86页 |
| 2 结果 | 第86-89页 |
| 3 讨论 | 第89-91页 |
| 第五章 中国对虾 Ras 基因克隆、表达及 SNP 分析 | 第91-106页 |
| 1 材料与方法 | 第92-97页 |
| 1.1 材料 | 第92-93页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第92页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第92页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第92-93页 |
| 1.2 方法 | 第93-97页 |
| 1.2.1 病毒悬液制备 | 第93页 |
| 1.2.2 WSSV 攻毒实验 | 第93页 |
| 1.2.3 RNA 提取 | 第93页 |
| 1.2.4 FcRas cDNA 克隆及表达分析 | 第93-95页 |
| 1.2.5 SNP 开发 | 第95-97页 |
| 2 结果 | 第97-104页 |
| 2.1 FcRas cDNA 序列与编码氨基酸序列分析 | 第97-101页 |
| 2.2 正常中国对虾不同组织内 FcRas mRNA 转录水平 | 第101-102页 |
| 2.3 感染 WSSV 后中国对虾不同组织内 FcRas mRNA 转录水平 | 第102-104页 |
| 3 讨论 | 第104-106页 |
| 第六章 中国对虾组织蛋白酶 B 基因克隆、表达及 SNP 分析 | 第106-126页 |
| 1 材料与方法 | 第106-112页 |
| 1.1 材料 | 第106-107页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第106-107页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第107页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第107页 |
| 1.2 方法 | 第107-112页 |
| 1.2.1 DNA 提取 | 第107页 |
| 1.2.2 病毒悬液和毒饵制备 | 第107页 |
| 1.2.3 WSSV 攻毒实验 | 第107-108页 |
| 1.2.4 RNA 提取 | 第108页 |
| 1.2.5 FcCathepsin B cDNA 克隆及表达分析 | 第108-110页 |
| 1.2.6 SNP 开发及抗 WSSV 关联分析 | 第110-112页 |
| 2 结果 | 第112-124页 |
| 2.1 FcCathepsin B cDNA 序列与编码氨基酸序列分析 | 第112-118页 |
| 2.2 正常中国对虾不同组织内 FcCathepsin B mRNA 转录水平 | 第118-119页 |
| 2.3 感染 WSSV 后中国对虾不同组织内 FcCathepsin B mRNA 转录水平 | 第119-121页 |
| 2.4 中国对虾 FcCathepsin B SNP 标记筛选 | 第121-124页 |
| 3 讨论 | 第124-126页 |
| 第七章 中国对虾转录组 SNP 分析 | 第126-157页 |
| 1 材料与方法 | 第127-140页 |
| 1.1 材料 | 第127-128页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第127页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第127-128页 |
| 1.1.3 主要试剂配方 | 第128页 |
| 1.2 方法 | 第128-140页 |
| 1.2.1 病毒悬液和毒饵制备 | 第128页 |
| 1.2.2 WSSV 攻毒实验 | 第128页 |
| 1.2.3 DNA、RNA 提取 | 第128-129页 |
| 1.2.4 SNP 候选位点挑选及 HRM 实验引物设计 | 第129页 |
| 1.2.5 引物筛选 | 第129页 |
| 1.2.6 设计探针 | 第129页 |
| 1.2.7 HRM 检测 | 第129-130页 |
| 1.2.8 SNP 位点信息统计 | 第130页 |
| 1.2.9 抗 WSSV 相关 SNP 筛选及分析 | 第130-140页 |
| 2 结果 | 第140-155页 |
| 2.1 引物筛选 | 第140页 |
| 2.2 SNP 筛选及遗传多态性 | 第140-148页 |
| 2.3 抗 WSSV 相关 SNP 位点筛选及研究 | 第148-155页 |
| 3 讨论 | 第155-157页 |
| 结论 | 第157-160页 |
| 参考文献 | 第160-170页 |
| 致谢 | 第170-171页 |
| 个人简历 | 第171页 |
| 发表的学术论文 | 第171-172页 |
| 获奖情况 | 第172-173页 |
