摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
英文缩略语 | 第13-18页 |
第一部分:miR-203a及其靶基因Bmi1在胆脂瘤中的表达和临床意义 | 第18-43页 |
1 前言 | 第18-20页 |
2 材料与方法 | 第20-31页 |
2.1 主要试剂和仪器 | 第20-22页 |
2.1.1 主要试剂 | 第20-21页 |
2.1.2 主要仪器 | 第21-22页 |
2.2 研究对象和组织标本 | 第22-23页 |
2.3 方法 | 第23-31页 |
2.3.1 总RNA的提取、反转录及Real-time PCR | 第23-26页 |
2.3.2 免疫组化 | 第26-27页 |
2.3.3 蛋白免疫印迹(Western blot) | 第27-29页 |
2.3.4 细胞的培养与传代 | 第29-30页 |
2.3.5 细胞的冻存与复苏 | 第30页 |
2.3.6 细胞转染 | 第30-31页 |
2.3.7 双荧光素酶报告基因检测 | 第31页 |
2.3.8 统计学分析 | 第31页 |
3 结果 | 第31-39页 |
3.1 miR-203a、miR-34a和miR125a在胆脂瘤组织中的检测结果 | 第31-33页 |
3.2 miR-203a在胆脂瘤中的表达量与胆脂瘤患者临床特征的关系 | 第33页 |
3.3 miR-203a和Bmi1在胆脂瘤中的表达和相关性的分析 | 第33-37页 |
3.4 miR-203a靶基因Bmi1的预测和鉴定结果 | 第37-39页 |
4 讨论 | 第39-41页 |
5 结论 | 第41-43页 |
第二部分:miR-203a及其靶基因Bmi1在胆脂瘤中的作用与机制的研究 | 第43-62页 |
1 前言 | 第43-44页 |
2 材料与方法 | 第44-48页 |
2.1 主要试剂和仪器 | 第44-46页 |
2.1.1 主要试剂 | 第44-45页 |
2.1.2 主要仪器 | 第45-46页 |
2.2 研究对象和组织标本 | 第46页 |
2.3 方法 | 第46-48页 |
2.3.1 MTS细胞增殖检测 | 第46-47页 |
2.3.2 细胞集落形成实验 | 第47页 |
2.3.3 细胞周期的检测 | 第47页 |
2.3.4 细胞凋亡的检测 | 第47-48页 |
2.3.5 细胞迁移实验 | 第48页 |
2.3.6 统计学分析 | 第48页 |
3 结果 | 第48-58页 |
3.1 抑制miR-203a的表达对人角质形成细胞生物学行为的影响 | 第48-55页 |
3.2 p-Akt在胆脂瘤中的表达以及与Bmi1相关性的分析结果 | 第55-57页 |
3.3 人角质形成细胞中miR-203a通过调节Bmi1影响p-Akt的表达 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-61页 |
5 结论 | 第61-62页 |
创新性的自我评价 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-70页 |
文献综述 | 第70-81页 |
参考文献 | 第76-81页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第81-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
个人简历 | 第83页 |