中文摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
第一章 生物样品中脂质类化合物的分析一脂质组学研究进展 | 第14-54页 |
1 引言 | 第14页 |
2 脂质类化合物的结构分类 | 第14-17页 |
2.1 甘油酯类化合物的结构 | 第15页 |
2.2 甘油磷脂类化合物的结构 | 第15-17页 |
2.3 鞘脂类化合物的结构 | 第17页 |
3 脂质类化合物的命名规则 | 第17-18页 |
4 脂质类化合物的生物学功能 | 第18-19页 |
4.1 甘油酯类化合物的生物学功能 | 第18页 |
4.2 甘油磷脂类化合物的生物学功能 | 第18-19页 |
4.3 鞘脂类化合物的生物学功能 | 第19页 |
5 样品前处理方法 | 第19-25页 |
5.1 提取前的细胞破碎 | 第19-20页 |
5.2 提取技术 | 第20-25页 |
6 仪器分析方法 | 第25-37页 |
6.1 色谱方法 | 第25-27页 |
6.2 脂质类化合物的离子化技术 | 第27-34页 |
6.3 用于脂质类化合物结构鉴定的质谱技术 | 第34-37页 |
7 数据分析 | 第37-42页 |
7.1 数据处理 | 第37-38页 |
7.2 统计分析 | 第38-39页 |
7.3 定量方法 | 第39-42页 |
8 参考文献 | 第42-54页 |
第二章 脂质组学分析技术研究 | 第54-99页 |
1 仪器设备、实验材料 | 第55页 |
1.1 仪器设备 | 第55页 |
1.2 实验材料 | 第55页 |
2 鞘脂组学实验方法 | 第55-63页 |
2.1 分析条件选择与方法优化 | 第55-58页 |
2.2 最终确定的样品前处理方法 | 第58页 |
2.3 标准曲线和质控样品的制备 | 第58-60页 |
2.4 分析条件 | 第60-61页 |
2.5 方法验证 | 第61-63页 |
3 改进的脂质组学实验方法 | 第63-74页 |
3.1 HPLC-MS | 第63页 |
3.2 脂质组学样品前处理 | 第63-64页 |
3.3 HPLC-MS条件 | 第64-68页 |
3.4 数据处理 | 第68-74页 |
3.5 HPLC-HRMS的部分方法验证:准确性、精密度和动态范围 | 第74页 |
4 实验结果与讨论 | 第74-96页 |
4.1 鞘脂组学方法的开发 | 第74-82页 |
4.2 鞘脂定量分析方法验证结果 | 第82-92页 |
4.3 改进的脂质组学方法 | 第92-96页 |
5 参考文献 | 第96-99页 |
第三章 基于鞘脂组学的迟发型超敏反应炎症模型生物标志物和雷公藤甲素抗炎作用机制研究 | 第99-118页 |
1 仪器设备、实验材料与实验动物 | 第100-101页 |
1.1 仪器设备 | 第100-101页 |
1.2 实验材料 | 第101页 |
1.3 实验动物 | 第101页 |
2 实验方法 | 第101-103页 |
2.1 动物实验 | 第101-102页 |
2.2 织匀浆液蛋白含量的测定 | 第102页 |
2.3 鞘脂组学样品分析 | 第102-103页 |
2.4 统计分析 | 第103页 |
3 实验结果与讨论 | 第103-113页 |
3.1 动物实验 | 第103-104页 |
3.2 鞘脂组学分析结果 | 第104-113页 |
4 结论 | 第113-114页 |
5 参考文献 | 第114-118页 |
第四章 乙肝及其相关慢性疾病的血清鞘脂代谢表征及其与疾病严重程度相关生物标志物的研究 | 第118-139页 |
1 实验材料与方法 | 第120-125页 |
1.1 入组病例 | 第120页 |
1.2 疾病诊断 | 第120-124页 |
1.3 血清样品收集 | 第124页 |
1.4 鞘脂组学 | 第124页 |
1.5 基于MELD的评分系统 | 第124页 |
1.6 统计分析 | 第124-125页 |
2 实验结果 | 第125-132页 |
2.1 研究对象 | 第125页 |
2.2 鞘脂组学发现各组间血清鞘脂的水平具有显著差异 | 第125-128页 |
2.3 发现和验证慢性乙肝的潜在生物标志物 | 第128-129页 |
2.4 发现新的HBV-ACLF 3个月预后生物标志物 | 第129-132页 |
3 讨论 | 第132-133页 |
4 结论 | 第133-135页 |
5 参考文献 | 第135-139页 |
第五章 基于脂质组学丙肝患者血浆脂质的表征和代谢特点研究 | 第139-152页 |
1 方法 | 第140-142页 |
1.1 实验材料 | 第140页 |
1.2 患者信息和入组标准 | 第140页 |
1.3 样本采集与分析 | 第140-141页 |
1.4 样品脂质组学分析 | 第141页 |
1.5 统计分析 | 第141-142页 |
2 结果与讨论 | 第142-148页 |
3 结论 | 第148-149页 |
4 参考文献 | 第149-152页 |
第六章 基于在线二维(HILICxRP)超高效液相色谱联用三重四级杆质谱仪的整体定性及靶向定量脂质组学平台研究 | 第152-178页 |
1 方法与材料 | 第154-160页 |
1.1 试剂 | 第154页 |
1.2 动物实验 | 第154页 |
1.3 脂质提取方法 | 第154-155页 |
1.4 二维HPLC-MS/MS方法的摸索 | 第155页 |
1.5 在线二维HPLC-MS/MS方法 | 第155-156页 |
1.6 使用非靶向脂质组学技术逐步筛选确定化合物的种类 | 第156-158页 |
1.7 定性与定量 | 第158-159页 |
1.8 准确度、精密度和定量限的研究 | 第159页 |
1.9 统计分析 | 第159-160页 |
2 结果与讨论 | 第160-171页 |
2.1 在线二维HILICxRP-C8超高效液相色谱方法的建立 | 第160-162页 |
2.2 在线二维HILICxRP-C8超高效液相色谱有助于PC和SM类化合物的鉴别区分 | 第162-164页 |
2.3 利用非靶向脂质组学策略筛选脂质化合物种类 | 第164-165页 |
2.4 在MRM模式下使用靶向脂质组组学策略进行定量分析 | 第165-170页 |
2.5 不同性别的大鼠血浆和不同位置采集的大鼠血浆均会影响血浆的脂质谱 | 第170-171页 |
3 结论 | 第171-175页 |
4 参考文献 | 第175-178页 |
英文缩略词 | 第178-180页 |
致谢 | 第180-181页 |
个人简历 | 第181-183页 |