| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 主要符号对照表 | 第9-10页 |
| 引言 | 第10-13页 |
| 第一章 材料与方法 | 第13-26页 |
| 1.1. 实验动物与细胞 | 第13页 |
| 1.2. 主要材料与仪器 | 第13-16页 |
| 1.2.1. 主要材料 | 第13-14页 |
| 1.2.2. 主要仪器 | 第14-16页 |
| 1.3. 雪灵芝粗多糖(AKCP)的制备 | 第16-17页 |
| 1.3.1. 制备雪灵芝粗多糖 | 第16页 |
| 1.3.2. 苯酚-硫酸法测定总糖含量 | 第16-17页 |
| 1.4. S180荷瘤鼠移植瘤模型的建立 | 第17页 |
| 1.4.1. S180腹水瘤细胞的培养 | 第17页 |
| 1.4.2. S180腹水瘤模型的建立 | 第17页 |
| 1.4.3. S180皮下移植瘤模型的建立 | 第17页 |
| 1.5. 实验动物分组及给药 | 第17-18页 |
| 1.6. S180实体瘤组织病理学的观察 | 第18-19页 |
| 1.7. 荧光定量PCR检测瘤组织Cyclin D1、PCNA、Ki67、Bcl-2 以及Bax m RNA的表达 | 第19-22页 |
| 1.7.1. 瘤组织中总RNA的提取 | 第19页 |
| 1.7.2. RNA浓度的测定 | 第19页 |
| 1.7.3. RNA完整性的检测 | 第19-20页 |
| 1.7.4. c DNA第一链的合成 | 第20-21页 |
| 1.7.5. Real-Time PCR扩增 | 第21-22页 |
| 1.8. Western blot检测瘤组织Cyclin D1、PCNA、Bcl-2 以及Bax蛋白的表达 | 第22-25页 |
| 1.8.1. 试剂配制方法 | 第22-23页 |
| 1.8.2. 瘤组织蛋白的提取 | 第23页 |
| 1.8.3. Western blot操作流程 | 第23-25页 |
| 1.9. 统计学方法 | 第25-26页 |
| 第二章 结果 | 第26-33页 |
| 2.1. AKCP总糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2. AKCP对S180荷瘤鼠肿瘤生长的抑制作用 | 第27-28页 |
| 2.3. S180实体瘤组织病理学表现 | 第28-29页 |
| 2.4. AKCP对瘤组织Cyclin D1、PCNA、Ki67、Bcl-2 以及Bax m RNA表达的影响 | 第29-31页 |
| 2.4.1. RNA浓度检测结果 | 第29页 |
| 2.4.2. RNA完整性检测结果 | 第29-30页 |
| 2.4.3. 荧光定量PCR扩增结果 | 第30-31页 |
| 2.5. AKCP对瘤组织中Cyclin D1、PCNA、Bcl-2 以及Bax蛋白表达的影响 | 第31-33页 |
| 第三章 讨论 | 第33-36页 |
| 第四章 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 综述 多糖通过抑制PI3K/Akt信号通路发挥抗肿瘤作用的研究进展 | 第41-47页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简介 | 第48页 |
