| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 引言 | 第10-14页 |
| 第一章 家蚕提取物对胰岛功能保护作用研究 | 第14-32页 |
| 实验一 家蚕提取物对损伤MIN6细胞的保护作用 | 第14-23页 |
| 1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1.1 实验仪器 | 第14-15页 |
| 1.2 实验试剂 | 第15页 |
| 1.3 实验家蚕与细胞 | 第15页 |
| 2 实验方法 | 第15-18页 |
| 2.1 主要溶液配制 | 第15-16页 |
| 2.2 细胞培养 | 第16-17页 |
| 2.3 正常MIN6细胞活性检测 | 第17页 |
| 2.4 过氧化氢(H_2O_2)诱导MIN6细胞损伤浓度考察 | 第17页 |
| 2.5 MIN6细胞损伤模型活性检测 | 第17页 |
| 2.6 统计学分析 | 第17-18页 |
| 3 实验结果 | 第18-20页 |
| 3.1 SA对正常MIN6细胞的存活率的影响 | 第18页 |
| 3.2 SB对正常MIN6细胞存活率的影响 | 第18-19页 |
| 3.3 H_2O_2诱导MIN6细胞损伤浓度的确定 | 第19页 |
| 3.4 SA对H_2O_2诱导MIN6细胞损伤保护作用 | 第19-20页 |
| 3.5 SB对H_2O_2诱导MIN6细胞损伤保护作用 | 第20页 |
| 4 小结与讨论 | 第20-23页 |
| 实验二 家蚕提取物对小鼠胰岛功能的保护作用 | 第23-32页 |
| 1 实验材料 | 第23-24页 |
| 1.1 实验仪器 | 第23-24页 |
| 1.2 实验试剂 | 第24页 |
| 1.3 实验动物 | 第24页 |
| 2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.1 主要溶液配制 | 第24-25页 |
| 2.2 模型复制与评价标准 | 第25页 |
| 2.3 实验动物分组及处理 | 第25页 |
| 2.4 检测指标 | 第25-26页 |
| 2.5 统计学处理 | 第26页 |
| 3 结果 | 第26-30页 |
| 3.1 小鼠的一般状态 | 第26页 |
| 3.2 SA对糖尿病小鼠体重的影响 | 第26-27页 |
| 3.3 SA对糖尿病小鼠血糖的影响 | 第27-28页 |
| 3.4 SA对糖尿病小鼠胰岛素的影响 | 第28-29页 |
| 3.5 对糖尿病小鼠胰岛形态的影响 | 第29-30页 |
| 4 小结与讨论 | 第30-32页 |
| 第二章 家蚕提取物改善胰岛素抵抗作用研究 | 第32-45页 |
| 1 实验材料 | 第32-33页 |
| 1.1 实验仪器 | 第32-33页 |
| 1.2 实验试剂 | 第33页 |
| 1.3 实验细胞 | 第33页 |
| 2 实验方法 | 第33-37页 |
| 2.1 主要试剂的配制 | 第33-34页 |
| 2.2 3T3-L1前脂肪细胞培养及诱导分化 | 第34页 |
| 2.3 油红O染色 | 第34-35页 |
| 2.4 胰岛素抵抗模型复制 | 第35页 |
| 2.5 正常脂肪细胞糖摄取检测 | 第35页 |
| 2.6 胰岛素抵抗模型糖摄取检测 | 第35页 |
| 2.7 目的蛋白样品的制备和Western blot测定 | 第35-37页 |
| 2.8 统计方法 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-43页 |
| 3.1 3T3-L1前脂肪细胞培养及诱导分化 | 第37-38页 |
| 3.2 油红O染色 | 第38-39页 |
| 3.3 TNF-α诱导脂肪细胞胰岛素抵抗的浓度考察 | 第39页 |
| 3.4 SA对正常3T3-L1细胞葡萄糖的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 SA对胰岛素抵抗模型糖摄取的影响 | 第40页 |
| 3.6 SA对3T3-L1胰岛素抵抗脂肪细胞IRS-1、p-IRS-1蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.7 SA对3T3-L1胰岛素抵抗脂肪细胞Akt、P-Akt蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
| 3.8 SA对3T3-L1胰岛素抵抗脂肪细胞NF-κB蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
| 4 小结与讨论 | 第43-45页 |
| 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 文献综述 | 第50-55页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简历 | 第56-57页 |
