摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4页 |
第一章 绪论 | 第8-33页 |
1.1 超分子化学与分子识别 | 第8-10页 |
1.2 荧光探针概述 | 第10-11页 |
1.3 荧光探针识别机理 | 第11-18页 |
1.3.1 光诱导电子转移(PET) | 第11-13页 |
1.3.2 分子内电荷转移(ICT) | 第13-14页 |
1.3.3 荧光共振能量转移(FRET) | 第14-16页 |
1.3.4 激基缔合物(Excimer) | 第16-17页 |
1.3.5 激发态分子内质子转移(ESIPT) | 第17-18页 |
1.4 反应型荧光探针 | 第18-19页 |
1.5 巯基氨基酸及检测 | 第19页 |
1.5.1 巯基氨基酸的性质及检测意义 | 第19页 |
1.6 Cys荧光探针的研究进展 | 第19-25页 |
1.6.1 香豆素衍生物探针 | 第19-20页 |
1.6.2 BODIPY衍生物探针 | 第20-22页 |
1.6.3 罗丹明、荧光素衍生物探针 | 第22-25页 |
1.7 BINOL化合物在识别手型分子物质方面的研究 | 第25-26页 |
1.8 本论文选题依据及研究思路 | 第26-28页 |
参考文献 | 第28-33页 |
第二章 基于BINOL骨架的香豆素类衍生物探针的设计、合成与表征 | 第33-91页 |
2.1 引言 | 第33-34页 |
2.2 实验部分 | 第34-35页 |
2.2.1 实验试剂 | 第34页 |
2.2.2 实验仪器 | 第34-35页 |
2.3 配体的合成 | 第35-42页 |
2.3.1 (R)?BINOL醛的合成 | 第35-36页 |
2.3.2 探针前体合成 | 第36-38页 |
2.3.3 探针的合成 | 第38-42页 |
2.4 香豆素衍生物探针的单晶培养 | 第42-43页 |
2.5 探针分子荧光量子产率的计算 | 第43-44页 |
2.6 探针L~1-L~6的熔程 | 第44页 |
2.7 (R)–1-(R)–4的高斯理论计算 | 第44-45页 |
2.8 L~1-L~6的高斯理论计算 | 第45-47页 |
本章小结 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-50页 |
附录 | 第50-91页 |
第三章 专一识别Cys的香豆素类衍生物荧光探针的荧光光谱研究 | 第91-104页 |
3.1 引言 | 第91-92页 |
3.2 实验部分 | 第92页 |
3.2.1 试剂 | 第92页 |
3.2.2 测试条件 | 第92页 |
3.3 L~1-L~4的光谱性质研究 | 第92-100页 |
3.3.1 在不同溶剂中的荧光响应 | 第92-94页 |
3.3.2 不同pH下探针L~4的稳定性 | 第94-95页 |
3.3.3 不同含水量条件下L~4的稳定性 | 第95页 |
3.3.4 L~1-L~4对Cys的竞争干扰测试 | 第95-97页 |
3.3.5 L~1-L~4对Cys的时间响应曲线 | 第97-98页 |
3.3.6 L~1-L~4对Cys的浓度滴定曲线 | 第98-100页 |
3.3.7 L~2对L-Cys和D-Cys的手性识别研究 | 第100页 |
3.4 L~2与Cys之间的识别机理 | 第100-101页 |
3.5 L~1-L~4与Cys作用后荧光量子产率的计算 | 第101-103页 |
本章小结 | 第103-104页 |
第四章 基于BINOL骨架的咪唑类衍生物配体的设计、合成 | 第104-109页 |
4.1 引言 | 第104页 |
4.2 实验部分 | 第104-108页 |
4.2.1 实验试剂 | 第104-105页 |
4.2.2 实验仪器 | 第105页 |
4.2.3 配体的合成 | 第105-108页 |
本章小结 | 第108-109页 |
参考文献 | 第109-110页 |
附录 | 第110-114页 |
论文总结 | 第114-115页 |
硕士期间研究成果 | 第115-116页 |
致谢 | 第116页 |