| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-28页 |
| 1.1 前言 | 第15页 |
| 1.2 瓜蒌 | 第15-18页 |
| 1.3 弯齿琵甲 | 第18-20页 |
| 1.4 中药血清药理学 | 第20-22页 |
| 1.5 Caspase-3 与宫颈癌 | 第22-26页 |
| 1.6 细胞坏死 | 第26页 |
| 1.7 本研究的前期工作 | 第26-28页 |
| 第2章 瓜蒌含药血清抑制Hela 细胞增殖及诱导凋亡的研究 | 第28-38页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.2.2 仪器 | 第28页 |
| 2.2.3 试剂 | 第28-31页 |
| 2.2.4 瘤株 | 第31页 |
| 2.3 方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 瓜蒌水煎剂的制备 | 第31页 |
| 2.3.2 瓜蒌含药血清的制备 | 第31页 |
| 2.3.3 细胞培养 | 第31-32页 |
| 2.3.4 MTT 法检测含药血清对Hela 细胞的抑制率 | 第32-33页 |
| 2.3.5 Wright’s-Giemsa 染色观察细胞形态变化 | 第33页 |
| 2.3.6 AO-EB 染色观察凋亡细胞 | 第33页 |
| 2.3.7 凋亡细胞生化特征检测 | 第33页 |
| 2.3.8 统计学分析 | 第33页 |
| 2.4 结果与分析 | 第33-36页 |
| 2.4.1 瓜蒌含药血清对Hela 细胞生长的抑制作用 | 第33-34页 |
| 2.4.2 瓜蒌含药血清对Hela 细胞形态学的影响 | 第34-36页 |
| 2.4.3 琼脂糖凝胶电泳检测凋亡细胞DNA 片段 | 第36页 |
| 2.5 讨论 | 第36-38页 |
| 第3章 弯齿琵甲含药血清抑制Hela 细胞增殖及诱导凋亡的研究 | 第38-44页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验材料 | 第38页 |
| 3.2.1 材料 | 第38页 |
| 3.2.2 仪器与试剂 | 第38页 |
| 3.2.3 瘤株 | 第38页 |
| 3.3 方法 | 第38-40页 |
| 3.3.1 弯齿琵甲含药血清的制备 | 第38-39页 |
| 3.3.2 MTT 法检测含药血清对Hela 细胞的抑制率 | 第39页 |
| 3.3.3 Wright’s-Giemsa 染色 | 第39页 |
| 3.3.4 AO-EB 染色 | 第39页 |
| 3.3.5 凋亡细胞生化特征检测 | 第39页 |
| 3.3.6 统计学分析 | 第39-40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-42页 |
| 3.4.1 MTT 法检测弯齿琵甲含药血清对Hela 细胞增殖的抑制作用 | 第40页 |
| 3.4.2 弯齿琵甲含药血清对Hela 细胞形态学的影响 | 第40-42页 |
| 3.4.3 凋亡细胞DNA 片段的检测 | 第42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-44页 |
| 第4章 弯齿琵甲粗蛋白诱导Hela 细胞凋亡机制的研究 | 第44-54页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.2.1 瘤株 | 第44页 |
| 4.2.2 仪器与试剂 | 第44-45页 |
| 4.3 方法 | 第45-47页 |
| 4.3.1 弯齿琵甲粗蛋白的制备 | 第45页 |
| 4.3.2 AO-EB 染色观察凋亡细胞 | 第45页 |
| 4.3.3 凋亡细胞生化特征检测 | 第45-46页 |
| 4.3.4 AnnexinV-FITC/PI 定量检测细胞凋亡 | 第46页 |
| 4.3.5 Western-blot 检测Caspase-3 的蛋白表达 | 第46-47页 |
| 4.3.6 统计学分析 | 第47页 |
| 4.4 结果与分析 | 第47-52页 |
| 4.4.1 弯齿琵甲粗蛋白对Hela 细胞形态的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.2 弯齿琵甲粗蛋白诱导细胞凋亡的DNA Ladder 检测 | 第48-49页 |
| 4.4.3 流式细胞仪检测不同加药量对细胞凋亡及坏死的影响 | 第49-52页 |
| 4.4.4 弯齿琵甲粗蛋白对Hela 细胞Caspase-3 蛋白表达的影响 | 第52页 |
| 4.5 讨论 | 第52-54页 |
| 第5章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 读研期间发表的论文 | 第60页 |
