| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 前言 | 第10-22页 |
| 1.1 金属增强荧光及其增强机制 | 第10-14页 |
| 1.1.1 金属增强荧光 | 第10-11页 |
| 1.1.2 金属增强荧光的荧光增强机制 | 第11-14页 |
| 1.2 影响金属增强荧光效果的因素 | 第14-18页 |
| 1.2.1 金属纳米材料种类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 金属与荧光分子间的距离 | 第15-17页 |
| 1.2.3 金属纳米粒子的形貌和尺寸 | 第17-18页 |
| 1.3 固体银膜增强荧光的研究 | 第18-20页 |
| 1.3.1 固体银膜 | 第18-19页 |
| 1.3.2. 硅基银膜（Ag@Si）等离子体基片 | 第19-20页 |
| 1.4 本论文的主要研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 实验技术与方法 | 第22-28页 |
| 2.1 实验表征技术 | 第22-26页 |
| 2.1.1 微阵列可见光及近红外光扫描成像系统 | 第22-23页 |
| 2.1.2 荧光显微镜 | 第23-26页 |
| 2.2 样品制备方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 免疫组化法 | 第26-27页 |
| 2.2.2 荧光原位杂交技术 | 第27-28页 |
| 第三章 蛋白质与核酸检测中的Ag@Si基片等离子体共振增强荧光成像 | 第28-47页 |
| 3.1 研究背景 | 第28-29页 |
| 3.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.2.1 蛋白分析材料 | 第29页 |
| 3.2.2 荧光免疫组化（IHC）标记材料 | 第29页 |
| 3.2.3 荧光原位杂交（FISH）标记材料 | 第29-30页 |
| 3.2.4 实验使用细胞 | 第30页 |
| 3.3 实验方法 | 第30-33页 |
| 3.3.1 Ag@Si表面以及纯硅片表面的微阵列刻印及分析过程 | 第30页 |
| 3.3.2 荧光免疫组化标记和荧光原位杂交标记细胞与组织切片样品的制作过程 | 第30-32页 |
| 3.3.3 扫描仪和显微镜的荧光表征 | 第32页 |
| 3.3.4 数据分析 | 第32-33页 |
| 3.4 实验结果 | 第33-47页 |
| 3.4.1 等离子体Ag@Si基片的表征 | 第33-34页 |
| 3.4.2 蛋白质微阵列分析中Ag@Si片的增强影响 | 第34-36页 |
| 3.4.3 Ag@Si基片在免疫组化法标记细胞与组织切片中的荧光增强效果 | 第36-42页 |
| 3.4.4 Ag@Si基片在荧光原位杂交组织样品中的增强效应 | 第42-45页 |
| 3.4.5 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 Ag@Si基片对SiNPs的荧光增强实验 | 第47-56页 |
| 4.1 研究背景 | 第47页 |
| 4.2 实验材料 | 第47-48页 |
| 4.3 实验方法 | 第48页 |
| 4.3.1 硅量子点的合成 | 第48页 |
| 4.3.2 硅量子点混合固体膜制作 | 第48页 |
| 4.3.3 PS小球混合固体膜制作 | 第48页 |
| 4.4 结果分析 | 第48-55页 |
| 4.4.1 硅量子点以及PS小球的表征图 | 第48-49页 |
| 4.4.2 不同混合膜在纯硅片与Ag@Si基片表面的荧光强度比较 | 第49-55页 |
| 4.5 本章总结 | 第55-56页 |
| 第五章 全文总结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文及科研成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
