| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第12-17页 |
| 1.1 西洋参概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 西洋参的形态特征 | 第12-13页 |
| 1.1.2 西洋参的药性 | 第13页 |
| 1.1.3 西洋参的应用价值 | 第13页 |
| 1.2 西洋参多糖的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2.1 西洋参多糖的提取分离纯化研究 | 第13-14页 |
| 1.2.2 西洋参多糖的结构分析研究 | 第14页 |
| 1.2.3 西洋参多糖的生物活性研究 | 第14-15页 |
| 1.3 多糖的胶囊研究 | 第15-16页 |
| 1.3.1 胶囊剂型概述 | 第15页 |
| 1.3.2 硬胶囊概述 | 第15-16页 |
| 1.3.3 多糖硬胶囊研究进展 | 第16页 |
| 1.4 本课题研究目的及意义 | 第16页 |
| 1.5 课题研究的主要内容 | 第16-17页 |
| 2 西洋参多糖提取工艺的研究 | 第17-35页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第17页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第17页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第17页 |
| 2.3 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.3.1 西洋参多糖含量的测定 | 第17-18页 |
| 2.3.2 水提醇沉法提取西洋参多糖的研究 | 第18-19页 |
| 2.3.3 酶-水提取西洋参多糖的研究 | 第19-20页 |
| 2.4 结果与分析 | 第20-33页 |
| 2.4.1 测定波长的选择 | 第20-21页 |
| 2.4.2 葡萄糖标准曲线的制作 | 第21页 |
| 2.4.3 水提醇沉法提取西洋参多糖提取率单因素实验结果分析 | 第21-24页 |
| 2.4.4 水提醇沉法提取西洋参多糖的正交试验设计结果分析 | 第24-25页 |
| 2.4.5 酶-水提取西洋参多糖的单因素实验结果分析 | 第25-28页 |
| 2.4.6 酶-水提取西洋参多糖的响应曲面优化设计结果分析 | 第28-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-35页 |
| 3 西洋参多糖脱蛋白工艺的研究 | 第35-47页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第35页 |
| 3.2.1 实验材料和试剂 | 第35页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.3.1 蛋白质含量的测定 | 第35-36页 |
| 3.3.2 西洋参多糖脱蛋白方法 | 第36-38页 |
| 3.4 结果与分析 | 第38-46页 |
| 3.4.1 蛋白标准曲线的制作 | 第38-39页 |
| 3.4.2 西洋参多糖脱蛋白结果 | 第39-41页 |
| 3.4.3 酶-Sevag法脱蛋白单因素实验结果分析 | 第41-42页 |
| 3.4.4 酶-Sevag法脱蛋白的响应曲面试验结果 | 第42-46页 |
| 3.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 4 西洋参多糖脱色工艺的研究 | 第47-54页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第47页 |
| 4.2.1 实验材料和试剂 | 第47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 4.3.1 多糖脱色率和保留率计算公式 | 第47页 |
| 4.3.2 活性炭法脱色 | 第47-48页 |
| 4.3.3 D4020静态脱色 | 第48页 |
| 4.3.4 双氧水脱色 | 第48页 |
| 4.3.5 反胶束溶液法 | 第48页 |
| 4.3.6 活性炭脱色单因素试验 | 第48-49页 |
| 4.3.7 正交设计 | 第49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4.4.1 西洋参多糖脱色结果比较 | 第49-50页 |
| 4.4.2 活性炭脱色单因素实验结果分析 | 第50-52页 |
| 4.4.3 活性炭脱色正交试验及方差分析结果 | 第52-53页 |
| 4.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 5 西洋参多糖结构初探 | 第54-66页 |
| 5.1 引言 | 第54页 |
| 5.2 实验材料和仪器 | 第54-55页 |
| 5.2.1 实验材料和试剂 | 第54页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第54-55页 |
| 5.3 实验方法 | 第55-56页 |
| 5.3.1 西洋参多糖初步纯化 | 第55页 |
| 5.3.2 西洋参多糖结构初探 | 第55-56页 |
| 5.3.3 数据分析 | 第56页 |
| 5.4 结果与分析 | 第56-65页 |
| 5.4.1 离子交换柱洗脱试验数据与结果 | 第56-57页 |
| 5.4.2 SepharoseCL-6B柱层析分离纯化结果 | 第57-59页 |
| 5.4.3 多糖的紫外扫描图谱 | 第59-60页 |
| 5.4.4 多糖的相对分子量 | 第60-61页 |
| 5.4.5 单糖组成分析 | 第61-63页 |
| 5.4.6 西洋参多糖红外光谱分析 | 第63-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 6 西洋参多糖胶囊的制备 | 第66-73页 |
| 6.1 引言 | 第66页 |
| 6.2 实验材料和仪器 | 第66页 |
| 6.2.1 实验材料及试剂 | 第66页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第66页 |
| 6.3 实验方法 | 第66-68页 |
| 6.3.1 辅料种类考察研究 | 第66-67页 |
| 6.3.2 制粒 | 第67-68页 |
| 6.3.3 颗粒中间体性质考察 | 第68页 |
| 6.3.4 装量规格确定 | 第68页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第68-72页 |
| 6.4.1 辅料种类考察研究结果 | 第68-69页 |
| 6.4.2 制粒工艺条件的考察 | 第69-70页 |
| 6.4.3 颗粒中间体性质考察结果 | 第70-72页 |
| 6.4.4 颗粒干燥温度的考察 | 第72页 |
| 6.4.5 装量规格确定 | 第72页 |
| 6.5 本章小结 | 第72-73页 |
| 结论 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
