| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章绪论 | 第11-37页 |
| 1.1 肿瘤转移与CTC | 第11-13页 |
| 1.1.1 肿瘤转移 | 第11-13页 |
| 1.1.2 CTC概述 | 第13页 |
| 1.2 CTC检测的临床意义 | 第13-16页 |
| 1.2.1 评价患者预后 | 第14-15页 |
| 1.2.2 检测治疗反应 | 第15页 |
| 1.2.3 药物敏感性试验 | 第15-16页 |
| 1.3 CTC检测前沿 | 第16-26页 |
| 1.3.1 CTC分离技术 | 第16-23页 |
| 1.3.2 CTC分析技术 | 第23-26页 |
| 1.4 其他CTCs研究热点 | 第26-29页 |
| 1.4.1 检测循环的巨型巨噬细胞 | 第26-27页 |
| 1.4.2 检测CTC clusters | 第27-28页 |
| 1.4.3 检测CTC囊泡 | 第28-29页 |
| 1.5 磁富集CTC技术面临的挑战 | 第29-35页 |
| 1.5.1 磁珠大小 | 第29-30页 |
| 1.5.2 超顺磁性 | 第30-31页 |
| 1.5.3 抗体偶联策略 | 第31-35页 |
| 1.6 课题研究的内容及意义 | 第35-37页 |
| 第2章仿生免疫磁球的构建及表征 | 第37-51页 |
| 2.1 前言 | 第37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-43页 |
| 2.2.1 实验材料、试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第38-39页 |
| 2.2.3 叠氮化细胞膜的提取 | 第39-40页 |
| 2.2.4 包膜磁球的制备及表征 | 第40-41页 |
| 2.2.5 抗体的环炔化修饰及表征 | 第41-42页 |
| 2.2.6 仿生免疫磁球的制备 | 第42-43页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第43-50页 |
| 2.3.1 叠氮化J774A.1 细胞的共聚焦表征 | 第43-44页 |
| 2.3.2 蔗糖密度梯度法提取细胞膜 | 第44-45页 |
| 2.3.3 包膜表征 | 第45-47页 |
| 2.3.4 抗体的环炔化修饰 | 第47-48页 |
| 2.3.5 仿生免疫磁球的制备 | 第48-50页 |
| 2.4 本章小结 | 第50-51页 |
| 第3章仿生免疫磁球捕捉CTCs | 第51-69页 |
| 3.1 前言 | 第51-52页 |
| 3.2 实验部分 | 第52-56页 |
| 3.2.1 实验材料、试剂 | 第52页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第52-53页 |
| 3.2.3 IMSs捕捉CTCs的条件优化 | 第53页 |
| 3.2.4 IMSs捕捉CTCs的时间优化 | 第53页 |
| 3.2.5 IMSs对细胞活性的影响 | 第53页 |
| 3.2.6 IMSs的膜流动性考察 | 第53-54页 |
| 3.2.7 MCF-7 对IMSs靶向特异性考察 | 第54页 |
| 3.2.8 J774A.1 对IMSs非特异性吸附能力考察 | 第54-55页 |
| 3.2.9 模拟血样中循环肿瘤细胞的检测 | 第55页 |
| 3.2.10 与同类型产品（MACS? beads）的比较 | 第55-56页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第56-67页 |
| 3.3.1 IMSs捕捉CTCs的最佳条件 | 第56-58页 |
| 3.3.2 IMSs捕捉CTCs的生物相容性、高效性和特异性 | 第58-62页 |
| 3.3.3 IMSs能降低Leukocytes的非特异性吸附 | 第62-63页 |
| 3.3.4 模拟血样中CTCs的灵敏检测 | 第63-65页 |
| 3.3.5 与MACS? beads背对背比较 | 第65-67页 |
| 3.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 第4章结论与展望 | 第69-70页 |
| 结论 | 第69页 |
| 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-79页 |
| 攻读学位期间发表论文与研究成果清单 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
