| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 縮略语 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一章 常用药用辅料对PEPT1转运功能的影响 | 第18-49页 |
| 第一节 Caco-2细胞模型的建立与药用辅料细胞毒性考察 | 第19-28页 |
| 一 材料与设备 | 第19-20页 |
| 1 仪器设备 | 第19-20页 |
| 2 药品与试剂 | 第20页 |
| 二 实验方法 | 第20-22页 |
| 1 溶液配制 | 第20-21页 |
| 2 细胞培养 | 第21-22页 |
| 3 细胞生长曲线的绘制与药用辅料细胞毒性试验 | 第22页 |
| 4 药用辅料pH值的测定 | 第22页 |
| 三 实验结果 | 第22-27页 |
| 1 细胞生长曲线绘制 | 第23页 |
| 2 细胞毒性试验 | 第23-25页 |
| 3 药用辅料pH值的测定 | 第25-27页 |
| 四 讨论 | 第27-28页 |
| 第二节 药用辅料对Gly-Sar细胞摄取的影响 | 第28-47页 |
| 一 材料与设备 | 第28-30页 |
| 1 仪器设备 | 第28-29页 |
| 2 药品与试剂 | 第29-30页 |
| 二 试验方法 | 第30-34页 |
| 1 Gly-Sar LC-MS/MS测定方法的建立 | 第30-32页 |
| 2 摄取试验 | 第32-33页 |
| 3 辅料对Gly-Sar摄取的影响 | 第33-34页 |
| 三 试验结果 | 第34-44页 |
| 1 Gly-Sar的HPLC-MS/MS测定方法学研究 | 第34-38页 |
| 2. 摄取试验结果 | 第38-44页 |
| 四 讨论 | 第44-47页 |
| 本章小结 | 第47-49页 |
| 第二章 药用辅料对Caco-2细胞中PEPT1的作用机制研究 | 第49-85页 |
| 第一节 药用辅料对Caco-2细胞中PEPT1蛋白表达的影响 | 第49-58页 |
| 一 材料与设备 | 第49-51页 |
| 1 仪器设备 | 第49-50页 |
| 2 药品与试剂 | 第50-51页 |
| 二 实验方法 | 第51-53页 |
| 1 主要试剂配制 | 第51页 |
| 2 蛋白样品制备 | 第51-52页 |
| 3 免疫印迹法 | 第52-53页 |
| 三 实验结果 | 第53-56页 |
| 四 讨论 | 第56-58页 |
| 第二节 药用辅料对Caco-2细胞中PEPT1 mRNA表达的影响 | 第58-71页 |
| 一 材料与设备 | 第58-60页 |
| 1 仪器设备 | 第58-59页 |
| 2 药品与试剂 | 第59-60页 |
| 二 实验方法 | 第60-64页 |
| 1 主要试剂配制 | 第60页 |
| 2 总RNA的提取 | 第60-61页 |
| 3 RNA纯度及浓度检测 | 第61-62页 |
| 4 逆转录合成cDNA | 第62页 |
| 5 荧光实时定量PCR | 第62-63页 |
| 6 数据处理及统计分析处理 | 第63-64页 |
| 三 实验结果 | 第64-69页 |
| 1 RNA完整性和纯度的检测 | 第64页 |
| 2 荧光定量PCR | 第64-69页 |
| 四 讨论 | 第69-71页 |
| 第三节 药用辅料对Caco-2细胞中胞内pH的影响 | 第71-80页 |
| 一 材料与设备 | 第71-72页 |
| 1 仪器设备 | 第71-72页 |
| 2 药品与试剂 | 第72页 |
| 二 实验方法 | 第72-73页 |
| 1 溶液配制 | 第72页 |
| 2 细胞pHi的测定 | 第72-73页 |
| 3 统计学处理 | 第73页 |
| 三 实验结果 | 第73-77页 |
| 四 讨论 | 第77-80页 |
| 第四节 药用辅料对Caco-2细胞膜流动性的影响 | 第80-83页 |
| 一 材料与设备 | 第80页 |
| 1 仪器设备 | 第80页 |
| 2 药品与试剂 | 第80页 |
| 二 实验方法 | 第80-81页 |
| 1 溶液配制 | 第81页 |
| 2. 辅料膜流动性的影响 | 第81页 |
| 三 实验结果 | 第81-82页 |
| 四 讨论 | 第82-83页 |
| 本章小结 | 第83-85页 |
| 第三章 活性辅料对大鼠小肠PEPT1转运功能及蛋白表达的影响 | 第85-115页 |
| 第一节 药用辅料对福辛普利钠大鼠药动学的影响 | 第85-108页 |
| 一 材料与设备 | 第85-86页 |
| 1 仪器设备 | 第85-86页 |
| 2 药品与试剂 | 第86页 |
| 二 实验方法 | 第86-91页 |
| 1 实验动物 | 第86页 |
| 2 色谱与质谱条件 | 第86-87页 |
| 3 样品处理 | 第87-88页 |
| 4 血浆样品中福辛普利钠稳定剂考察 | 第88-89页 |
| 5 血浆样品HPLC-MS/MS测定方法学考察 | 第89-90页 |
| 6 大鼠灌胃液的配制 | 第90页 |
| 7 大鼠给药方案与体内药动学研究 | 第90-91页 |
| 8 药动学参数与数据分析 | 第91页 |
| 三 实验结果 | 第91-105页 |
| 1 血浆样品中福辛普利钠稳定剂考察 | 第91-94页 |
| 2 血浆样品分析方法学考察结果 | 第94-99页 |
| 3 大鼠体内药动学参数测定结果 | 第99-105页 |
| 四 讨论 | 第105-108页 |
| 第二节 药用辅料对大鼠肠道PEPT1蛋白的影响 | 第108-114页 |
| 一 材料与设备 | 第108-109页 |
| 1 仪器设备 | 第108-109页 |
| 2 药品与试剂 | 第109页 |
| 二 实验方法 | 第109-112页 |
| 1 溶液配制 | 第109-110页 |
| 2 样品制备 | 第110页 |
| 3 膜蛋白提取 | 第110页 |
| 4 蛋白电泳和免疫印迹 | 第110-111页 |
| 5 统计学处理 | 第111-112页 |
| 三 实验结果 | 第112-113页 |
| 四 讨论 | 第113-114页 |
| 本章小结 | 第114-115页 |
| 结论与展望 | 第115-118页 |
| 1 全文结论 | 第115-116页 |
| 2 创新性 | 第116页 |
| 3 展望 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-126页 |
| 综述 | 第126-143页 |
| 参考文献 | 第137-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 附录 | 第144页 |
