摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
第1章 绪论 | 第18-37页 |
1.1 糖尿病概述 | 第18-23页 |
1.1.1 糖尿病及其分类 | 第18-19页 |
1.1.2 2型糖尿病的发病机制 | 第19-22页 |
1.1.3 2型糖尿病的干预研究进展 | 第22-23页 |
1.2 α-葡萄糖苷酶抑制剂与2型糖尿病干预 | 第23-27页 |
1.2.1 α-葡萄糖苷酶抑制剂简介 | 第23-24页 |
1.2.2 天然产物中的α-葡萄糖苷酶抑制剂研究进展 | 第24-26页 |
1.2.3 α-葡萄糖苷酶抑制剂的降糖机制 | 第26-27页 |
1.3 小麦麸皮的降糖作用研究 | 第27-35页 |
1.3.1 小麦麸皮的开发研究现状 | 第27-28页 |
1.3.2 小麦麸皮中的降糖功能因子研究 | 第28-33页 |
1.3.3 小麦麸皮的降糖机制研究进展 | 第33-35页 |
1.4 论文的立题依据及主要研究内容 | 第35-37页 |
第2章 小麦麸皮α-葡萄糖苷酶抑制剂的分离纯化与鉴定 | 第37-63页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第37-39页 |
2.1.1 实验材料 | 第37页 |
2.1.2 实验试剂 | 第37-38页 |
2.1.3 试剂的配制 | 第38页 |
2.1.4 主要仪器 | 第38-39页 |
2.2 实验方法 | 第39-43页 |
2.2.1 小麦麸皮提取物的制备 | 第39页 |
2.2.2 小麦麸皮α-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第39页 |
2.2.3 小麦麸皮提取物对α-葡萄糖苷酶的IC_(50)值测定 | 第39-40页 |
2.2.4 小麦麸皮醇提物的制备及系统溶剂分离活性组分 | 第40页 |
2.2.5 小麦麸皮醇提物石油醚萃取部位的硅胶柱层析分离 | 第40-41页 |
2.2.6 具有抑制α-葡萄糖苷酶活α-流分的MS分析 | 第41-42页 |
2.2.7 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性流分的凝胶柱层析分离 | 第42页 |
2.2.8 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分的紫外吸收波长测定 | 第42页 |
2.2.9 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分的HPLC分析 | 第42页 |
2.2.10 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分的LC/MS分析 | 第42-43页 |
2.2.11 实验数据统计与分析 | 第43页 |
2.3 结果与讨论 | 第43-62页 |
2.3.1 小麦麸皮不同浸提物对α-葡萄糖苷酶的抑制活性 | 第43-44页 |
2.3.2 95%乙醇提物的制备及溶剂系统分离 | 第44-45页 |
2.3.3 小麦麸皮醇提物各极性部位萃取物对α-葡萄糖苷酶的抑制活性 | 第45-46页 |
2.3.4 硅胶柱层析分离纯化小麦麸皮醇提物石油醚萃取部位 | 第46-48页 |
2.3.5 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性流分的MS分析 | 第48-50页 |
2.3.6 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性流分3和13的凝胶柱层析分离 | 第50-51页 |
2.3.7 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分F3-17和F13-26的紫外-可见全波长扫描 | 第51-52页 |
2.3.8 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分F3-17和F13-26的HPLC分析 | 第52-53页 |
2.3.9 具有抑制α-葡萄糖苷酶活性组分F3-17和F13-26的LC/MS分析 | 第53-62页 |
2.4 本章小结 | 第62-63页 |
第3章 芹菜素和烷基间苯二酚同系物对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学研究 | 第63-75页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第63-64页 |
3.1.1 实验材料 | 第63页 |
3.1.2 实验试剂 | 第63页 |
3.1.3 试剂的配制 | 第63-64页 |
3.1.4 主要仪器 | 第64页 |
3.2 实验方法 | 第64-65页 |
3.2.1 鼠肠α-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第64-65页 |
3.2.2 不同浓度抑制剂对酶促反应的影响 | 第65页 |
3.2.3 AP、ARS的抑制动力学测定 | 第65页 |
3.3. 结果与讨论 | 第65-73页 |
3.3.1 AP对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第65-66页 |
3.3.2 ARS对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第66-67页 |
3.3.3 AP对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学参数 | 第67-70页 |
3.3.4 ARS对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学参数 | 第70-73页 |
3.4 本章小结 | 第73-75页 |
第4章 芹菜素、烷基间苯二酚同系物抑制α-葡萄糖苷酶的分子作用机制 | 第75-87页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第75-76页 |
4.1.1 实验试剂 | 第75页 |
4.1.2 试剂的配制 | 第75-76页 |
4.1.3 主要仪器 | 第76页 |
4.2 实验方法 | 第76-78页 |
4.2.1 AP、5-二十一烷基间苯二酚对α-葡萄糖苷酶的荧光猝灭作用 | 第76页 |
4.2.2 AP、5-二十一烷基间苯二酚对α-葡萄糖苷酶的荧光猝灭类型分析 | 第76-77页 |
4.2.3 AP、5-二十一烷基间苯二酚对α-葡萄糖苷酶的相互作用类型分析 | 第77页 |
4.2.4 α-葡萄糖苷酶的同源建模 | 第77-78页 |
4.2.5 分子对接分析AP、5-二十一烷基间苯二酚与α-葡萄糖苷酶的相互作用 | 第78页 |
4.3 结果与讨论 | 第78-85页 |
4.3.1 AP、5-二十一烷基间苯二酚对α-葡萄糖苷酶的荧光猝灭光谱 | 第78-81页 |
4.3.2 AP、5-二十一烷基间苯二酚与α-葡萄糖苷酶相互作用力分析 | 第81-82页 |
4.3.3 α-葡萄糖苷酶同源建模结果 | 第82页 |
4.3.4 AP、5-二十一烷基间苯二酚与α-葡萄糖苷酶的分子对接模拟 | 第82-85页 |
4.4 本章小结 | 第85-87页 |
第5章 芹菜素和烷基间苯二酚同系物对2型糖尿病小鼠糖脂代谢的干预研究 | 第87-96页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第87-88页 |
5.1.1 实验动物 | 第87页 |
5.1.2 实验试剂 | 第87-88页 |
5.1.3 试剂的配制 | 第88页 |
5.1.4 主要仪器 | 第88页 |
5.2 实验方法 | 第88-90页 |
5.2.1 2型糖尿病小鼠模型的建立 | 第88-89页 |
5.2.2 实验动物的分组和给药 | 第89页 |
5.2.3 小鼠生存状态的观察 | 第89页 |
5.2.4 空腹血糖值的测定 | 第89页 |
5.2.5 口服葡萄糖耐量的测定 | 第89-90页 |
5.2.6 血清生化指标的测定 | 第90页 |
5.2.7 数据统计与分析 | 第90页 |
5.3 结果与讨论 | 第90-95页 |
5.3.1 AP、ARS对2型糖尿病小鼠的生活状态的改善 | 第90-91页 |
5.3.2 AP、ARS对2型糖尿病小鼠空腹血糖值的影响 | 第91-92页 |
5.3.3 AP、ARS对2型糖尿病小鼠葡萄糖耐量的影响 | 第92-93页 |
5.3.4 AP、ARS干预对2型糖尿病小鼠血脂的影响 | 第93-95页 |
5.4 本章小结 | 第95-96页 |
第6章 芹菜素和烷基间苯二酚同系物干预2型糖尿病的机制研究 | 第96-115页 |
6.1 实验材料与仪器 | 第96-98页 |
6.1.1 实验材料 | 第96页 |
6.1.2 实验试剂 | 第96-97页 |
6.1.3 试剂的配制 | 第97页 |
6.1.4 主要仪器 | 第97-98页 |
6.2 实验方法 | 第98-100页 |
6.2.1 血清胰岛素含量的测定以及胰岛素抵抗指数计算 | 第98页 |
6.2.2 小鼠脏器/组织的获取 | 第98页 |
6.2.3 肝脏、肌肉组织糖代谢的变化 | 第98-99页 |
6.2.4 小鼠脏器指数的测定方法 | 第99页 |
6.2.5 组织病理学观察 | 第99页 |
6.2.6 胰腺细胞超微结构观察 | 第99页 |
6.2.7 机体抗氧化水平的测定 | 第99页 |
6.2.8 数据统计与分析 | 第99-100页 |
6.3 结果与讨论 | 第100-114页 |
6.3.1 AP、ARs对小鼠血清胰岛素水平及胰岛素抵抗的影响 | 第100-101页 |
6.3.2 AP、ARs对2型糖尿病小鼠肝脏、骨骼肌糖代谢的影响 | 第101-103页 |
6.3.3 AP、ARs对2型糖尿病小鼠组织器官的保护作用 | 第103-109页 |
6.3.4 AP、ARs对2型糖尿病小鼠抗氧化能力的影响 | 第109-114页 |
6.4 本章小结 | 第114-115页 |
第7章 结论与展望 | 第115-117页 |
7.1 主要结论 | 第115-116页 |
7.2 工作不足之处以及工作展望 | 第116-117页 |
7.2.1 工作不足之处 | 第116页 |
7.2.2 工作展望 | 第116-117页 |
创新点 | 第117-118页 |
参考文献 | 第118-130页 |
学习期间发表的论文与专利申请 | 第130-131页 |
致谢 | 第131页 |