| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第12-30页 |
| 1.1 DNA自组装纳米技术简介 | 第12-15页 |
| 1.2 基于等温扩增技术的DNA自组装纳米结构的应用 | 第15-18页 |
| 1.2.1 核酸纳米结构的构建 | 第15-17页 |
| 1.2.2 核酸水凝胶的构建 | 第17-18页 |
| 1.3 本文的研究思路及设计原理 | 第18-21页 |
| 参考文献 | 第21-30页 |
| 第二章 基于“Y”交叉结构及核酸内切酶循环放大的RNA无标记电化学检测 | 第30-47页 |
| 2.1 引言 | 第30-34页 |
| 2.1.1 试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.2 仪器 | 第32-33页 |
| 2.1.3 发卡探针在Au电极表面的固定 | 第33页 |
| 2.1.4 模板增强杂交反应（TEHP）及滚环复制（RCA） | 第33-34页 |
| 2.1.5 电化学检测 | 第34页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第34-42页 |
| 2.2.1 实验原理 | 第34-36页 |
| 2.2.2 修饰的Au电极电化学阻抗的测量 | 第36-37页 |
| 2.2.3 级联TEHP的单循环放大 | 第37-38页 |
| 2.2.4 反应条件的优化 | 第38-40页 |
| 2.2.5 let-7d RNA的灵敏检测 | 第40-41页 |
| 2.2.6 电化学传感器的选择性 | 第41页 |
| 2.2.7 传感器在实际样品中的应用 | 第41-42页 |
| 2.3 小结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 第三章 基于外切酶的循环放大检测细胞内ATP | 第47-64页 |
| 3.1 引言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48-51页 |
| 3.2.1 试剂 | 第48-49页 |
| 3.2.2 仪器 | 第49页 |
| 3.2.3 氧化石墨烯处理 | 第49页 |
| 3.2.4 氧化石墨烯用量优化 | 第49-50页 |
| 3.2.5 ATP体外线性检测 | 第50页 |
| 3.2.6 细胞培养 | 第50页 |
| 3.2.7 细胞内实验及成像 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-59页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第51-52页 |
| 3.3.2 氧化石墨烯纳米片（GO-nanosheets）表征 | 第52页 |
| 3.3.3 氧化石墨烯用量的优化 | 第52-53页 |
| 3.3.4 实验的可行性验证 | 第53-55页 |
| 3.3.5 循环放大策略体外检测ATP | 第55-56页 |
| 3.3.6 循环放大策略的特异性 | 第56页 |
| 3.3.7 循环放大策略检测细胞内ATP | 第56-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 第四章 基于HCR反应的miRNA检测以及基于治疗型miRNA纳米水凝胶的肿瘤细胞抑制 | 第64-85页 |
| 4.1 引言 | 第64-66页 |
| 4.2 实验部分 | 第66-71页 |
| 4.2.1 试剂 | 第66-68页 |
| 4.2.2 仪器 | 第68页 |
| 4.2.3 MnO_2的合成 | 第68-69页 |
| 4.2.4 靶标引导的DNA自组装检测miRNA | 第69页 |
| 4.2.5 靶标引导的DNA自组装纳米凝胶的形成 | 第69-70页 |
| 4.2.6 DNA纳米凝胶的细胞实验 | 第70-71页 |
| 4.2.7 细胞毒性实验（MTT） | 第71页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第71-78页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第71-74页 |
| 4.3.2 MnO_2和水凝胶的电镜表征 | 第74页 |
| 4.3.3 MnO_2用量及反应时间优化 | 第74-75页 |
| 4.3.4 基于杂交链式反应及MnO_2荧光猝灭的miRNA检测 | 第75-76页 |
| 4.3.5 miRNA检测技术的特异性 | 第76-77页 |
| 4.3.6 DNA纳米水凝胶的细胞摄入 | 第77-78页 |
| 4.3.7 细胞毒性实验 | 第78页 |
| 4.4 小结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-85页 |
| 第五章 总结与展望 | 第85-86页 |
| 攻读硕士期间论文发表情况 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
