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棉花显性无腺体基因Gl2e的克隆鉴定与作用机制分析

摘要第7-9页
ABSTRACT第9-11页
缩略词表第12-13页
1 文献综述第13-29页
    1.1 棉花色素腺体和棉酚第13-15页
        1.1.1 棉花色素腺体性状第13页
        1.1.2 棉酚的特性第13-14页
        1.1.3 色素腺体与棉酚的关系第14页
        1.1.4 色素腺体研究的重要性第14-15页
    1.2 色素腺体性状的遗传研究第15-17页
        1.2.1 色素腺体相关的控制基因第15-16页
        1.2.2 色素腺体相关的复等位基因第16-17页
    1.3 显性无腺体基因Gl_2~e的研究第17-18页
        1.3.1 Gl_2~e基因的发现与遗传分析第17-18页
        1.3.2 Gl_2~e基因的研究进展第18页
    1.4 棉酚生物合成途径及相关基因的研究第18-21页
        1.4.1 棉酚的生物合成途径第18-19页
        1.4.2 棉酚生物合成途径中主要基因的研究第19-21页
    1.5 色素腺体相关材料的组学研究第21-22页
    1.6 低酚棉育种进展第22-24页
    1.7 植物MYC转录因子研究进展第24-27页
        1.7.1 MYC1的研究第25页
        1.7.2 MYC2的研究第25-27页
        1.7.3 MYC3和MYC4的研究第27页
    1.8 研究目的与意义第27-29页
2 材料与方法第29-47页
    2.1 实验仪器第29页
    2.2 实验材料第29页
    2.3 候选基因的确定第29-30页
    2.4 候选基因序列分析第30-36页
        2.4.1 RNA的提取第30-31页
        2.4.2 反转录cDNA第31页
        2.4.3 候选基因的扩增第31-32页
        2.4.4 扩增产物的纯化第32页
        2.4.5 TA克隆第32-33页
        2.4.6 转化第33-34页
        2.4.7 重组子检测与测序分析第34-36页
    2.5 基因表达量分析第36-37页
        2.5.1 RNA提取与反转录第36页
        2.5.2 荧光定量PCR(qRT-PCR)第36-37页
    2.6 启动子分析第37-39页
        2.6.1 棉花DNA提取第37-38页
        2.6.2 启动子序列和顺式作用元件分析第38页
        2.6.3 启动子甲基化分析第38-39页
    2.7 亚细胞定位第39-40页
        2.7.1 Gl_2~e基因融合表达载体构建第39-40页
        2.7.2 冻融法转化农杆菌LBA4404第40页
        2.7.3 洋葱表皮细胞瞬时表达第40页
    2.8 酵母中转录激活活性分析第40-42页
        2.8.1 酵母表达载体构建第40-41页
        2.8.2 酵母感受态的制备第41页
        2.8.3 PEG/LiAc法转化酵母第41-42页
    2.9 病毒诱导的基因沉默(VIGS)第42-43页
        2.9.1 病毒表达载体构建第42页
        2.9.2 VIGS实验第42-43页
    2.10 棉花的遗传转化第43页
    2.11 小RNA测序与数据分析第43-46页
        2.11.1 RNA样品制备第43-44页
        2.11.2 Total RNA质量检测与文库构建第44页
        2.11.3 测序数据预处理第44页
        2.11.4 已知miRNA分析第44-45页
        2.11.5 新miRNA预测第45页
        2.11.6 miRNA差异表达分析第45页
        2.11.7 miRNA靶基因预测与功能富集分析第45-46页
        2.11.8 miRNA及靶基因的qRT-PCR验证第46页
    2.12 亚洲棉、雷蒙德氏棉和陆地棉中MYC蛋白的鉴定与分析第46-47页
3 结果与分析第47-68页
    3.1 Gl_2~e基因的图位克隆与候选基因分析第47-49页
        3.1.1 Gl_2~e基因的精细定位与候选基因确认第47-48页
        3.1.2 GhMYC2基因序列分析第48-49页
        3.1.3 GhMYC2基因表达分析第49页
    3.2 GhMYC2基因启动子分析第49-50页
        3.2.1 启动子序列分析第49-50页
        3.2.2 启动子顺式作用元件分析第50页
        3.2.3 启动子甲基化分析第50页
    3.3 GhMYC2转录因子亚细胞定位第50-51页
    3.4 GhMYC2转录因子激活活性分析第51-53页
        3.4.1 转录激活活性验证第51-52页
        3.4.2 转录激活活性区分析第52-53页
    3.5 GhMYC2转录因子功能验证第53-56页
        3.5.1 病毒诱导的基因沉默第53-54页
        3.5.2 棉花的遗传转化第54-56页
    3.6 腺体相关材料miRNA分析第56-66页
        3.6.1 小RNA测序数据统计第56-57页
        3.6.2 已知miRNA和新的miRNA分析第57-58页
        3.6.3 差异表达miRNA分析第58-59页
        3.6.4 差异表达miRNA靶基因预测第59-60页
        3.6.5 差异表达miRNA的靶基因GO和KEGG分析第60-64页
        3.6.6 miRNA和靶基因的表达量验证第64-66页
    3.7 棉花MYC蛋白的鉴定与进化分析第66-68页
4 结论与讨论第68-74页
    4.1 Gl_2~e候选基因的确定第68页
    4.2 GhMYC2基因的表达第68-69页
    4.3 GhMYC2基因的功能验证第69页
    4.4 GhMYC2作用机制推测第69-70页
    4.5 GhMYC2基因在低酚棉育种中的应用第70-71页
    4.6 腺体相关材料小RNA分析第71-72页
    4.7 小RNA靶基因分析第72页
    4.8 研究展望第72-73页
    4.9 全文结论第73-74页
参考文献第74-87页
致谢第87-88页
附录第88-102页

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