| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩写词 | 第11-15页 |
| 1 前言 | 第15-31页 |
| 1.1 高等植物细胞质雄性不育 | 第15-16页 |
| 1.1.1 雄性不育的类型 | 第15页 |
| 1.1.2 植物细胞质雄性不育在杂种优势中的应用 | 第15-16页 |
| 1.1.3 植物细胞质雄性不育的分子机制 | 第16页 |
| 1.2 高等植物的线粒体基因组 | 第16-19页 |
| 1.2.1 高等植物线粒体基因的特点 | 第16-17页 |
| 1.2.2 高等植物线粒体基因组中与雄性不育相关的基因 | 第17-19页 |
| 1.3 MSHl基因与MSH1蛋白的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.4 影响线粒体基因重组的RecA3和OSB1核基因的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4.1 RecA3基因的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4.2 OSB1基因的研究进展 | 第22页 |
| 1.5 芸薹属作物的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.6 芸薹属作物的离体再生的研究进展 | 第23-26页 |
| 1.6.1 植物组织培养原理 | 第24页 |
| 1.6.2 芸薹属蔬菜器官离体再生的影响因素 | 第24-26页 |
| 1.7 榨菜遗传转化的研究现状 | 第26-28页 |
| 1.7.1 影响农杆菌遗传转化效率的因素 | 第27-28页 |
| 1.7.2 关于分子育种 | 第28页 |
| 1.8 RNA干扰及其作用机理 | 第28-29页 |
| 1.9 本研究的目的及意义 | 第29-31页 |
| 2 芸薹属MSH1基因的克隆与分析 | 第31-45页 |
| 2.1 材料和方法 | 第31-38页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第31-38页 |
| 2.2 结果与分析 | 第38-43页 |
| 2.2.1 芸薹属MSH1基因的克隆 | 第38-40页 |
| 2.2.2 芸薹属中MSH1基因的保守功能域 | 第40页 |
| 2.2.3 芸薹属作物MSH1蛋白的同源性分析 | 第40-42页 |
| 2.2.4 芸薹属作物MSH1进化分析 | 第42-43页 |
| 2.3 讨论 | 第43-45页 |
| 3 芸薹属OSB1和RecA3基因的克隆与分析 | 第45-51页 |
| 3.1 材料和方法 | 第45页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第45页 |
| 3.2 结果与分析 | 第45-50页 |
| 3.2.1 芸薹属埃塞俄比亚芥Brassica carinata OSB1和RecA3基因的克隆 | 第46页 |
| 3.2.2 芸薹属中OSB1和RecA3蛋白序列同源性比对 | 第46-48页 |
| 3.2.3 芸薹属中OSB1和RecA3基因的功能域分析 | 第48-49页 |
| 3.2.4 芸薹属中OSB1和RecA3基因的进化分析 | 第49-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50-51页 |
| 4 榨菜MSH1-RNAi系的构建 | 第51-67页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第51-58页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第51-53页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第53-58页 |
| 4.2 结果与分析 | 第58-65页 |
| 4.2.1 转基因榨菜的获得 | 第58-59页 |
| 4.2.2 抗性转化株的PCR检测 | 第59-60页 |
| 4.2.3 T_0代转基因榨菜的表型观察 | 第60-61页 |
| 4.2.4 T_0代转基因榨菜MSH1基因的转录水平鉴定 | 第61页 |
| 4.2.5 T_1代转基因榨菜的检测 | 第61-62页 |
| 4.2.6 T_1代转基因榨菜MSH1基因的转录水平鉴定 | 第62-63页 |
| 4.2.7 T_1代转基因榨菜的幼苗期表型 | 第63-64页 |
| 4.2.8 转基因T_1代植株线粒体基因组重组分析 | 第64-65页 |
| 4.3 讨论 | 第65-67页 |
| 5 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 附录 | 第75-93页 |
