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TET蛋白突变体的制备及其性质的研究

摘要第4-5页
Abstract第5页
第1章 绪论第8-16页
    1.1 课题来源第8-10页
        1.1.1 TET蛋白的介绍第8页
        1.1.2 TET蛋白功能的研究进展第8-10页
    1.2 蛋白质分离纯化的研究现状第10-11页
    1.3 可溶性蛋白获取的途径研究现状第11-14页
        1.3.1 体内获得可溶性外源蛋白研究现状第11-12页
        1.3.2 蛋白体外复性研究现状第12-14页
    1.4 本文主要研究内容及意义第14-15页
    1.5 本文技术路线第15-16页
第2章 实验材料与方法第16-24页
    2.1 实验材料第16-18页
        2.1.1 菌株及载体第16页
        2.1.2 实验试剂第16-17页
        2.1.3 主要实验仪器第17-18页
    2.2 实验方法第18-23页
        2.2.1 TET突变体氨基酸密码子的优化方法第18页
        2.2.2 TET重叠截短体的构建第18-19页
        2.2.3 TET突变体蛋白可溶性验证第19-20页
        2.2.4 TET突变体蛋白菌体扩大培养第20-21页
        2.2.5 镍螯合柱亲和层析法纯化TET突变体蛋白第21-22页
        2.2.6 变性TET突变体蛋白体外复性第22页
        2.2.7 TET突变体蛋白浓度测定第22页
        2.2.8 TET突变体蛋白结构性质检测第22-23页
    2.3 本章小结第23-24页
第3章 TET突变体蛋白的表达及可溶性研究第24-39页
    3.1 TET突变体的制备第24-30页
        3.1.1 改造pET28b(+)载体上的酶切位点第24-25页
        3.1.2 TET 目的基因与 pET28b 的重组体的构建第25-27页
        3.1.3 TET 核苷酸序列优化设计及优化第27-28页
        3.1.4 TET 截短体的制备第28-30页
    3.2 培养条件对TET突变体表达及可溶性影响第30-34页
        3.2.1 表达条件的优化第30-32页
        3.2.2 化学试剂对TET突变体表达及可溶性影响第32-34页
    3.3 融合蛋白对TET突变体表达及可溶性影响第34-36页
        3.3.1 SUMO与pET28b重组体的构建第34-35页
        3.3.2 pET28b-SUMO-TET重组体的构建第35页
        3.3.3 SUMO对TET突变体蛋白表达及可溶性影响第35-36页
    3.4 TET突变体和trigger factor共表达的研究第36-38页
        3.4.1 pBAD/Mys-His-A-trigger factor表达载体的构建第36-37页
        3.4.2 trigger factor对TET突变体蛋白表达及可溶性影响第37-38页
    3.5 本章小结第38-39页
第4章 TET突变体的复性及光学性质的表征第39-57页
    4.1 引言第39-40页
    4.2 hTET1 突变体蛋白的制备第40-44页
        4.2.1 变性hTET1 突变体蛋白的纯化及复性第40-43页
        4.2.2 复性hTET1 突变体蛋白结构性质的表征第43-44页
    4.3 hTET2 突变体蛋白的制备第44-48页
        4.3.1 变性hTET2 突变体蛋白的纯化及复性第44-47页
        4.3.2 复性hTET2 突变体蛋白结构性质的表征第47-48页
    4.4 hTET3 突变体蛋白的制备第48-52页
        4.4.1 变性hTET3 突变体蛋白的纯化及复性第48-51页
        4.4.2 复性hTET3 突变体蛋白结构性质的表征第51-52页
    4.5 zebrafish-TET2 突变体蛋白的制备第52-56页
        4.5.1 变性zebrafish-TET2 突变体蛋白的纯化及复性第52-55页
        4.5.2 复性zebrafish-TET2 突变体蛋白结构性质的表征第55-56页
    4.6 讨论第56页
    4.7 本章小结第56-57页
结论第57-58页
建议及展望第58-59页
参考文献第59-63页
攻读硕士学位期间发表的论文及其他结果第63-65页
致谢第65页

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