| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 综述 | 第8-24页 |
| 1.1 独角金内酯(Strigolactones,SLs)的生物学功能 | 第8-12页 |
| 1.1.1 独脚金内酯能促进寄生植物种子的萌发 | 第8页 |
| 1.1.2 SL能促进丛枝菌根真菌(Arbuscular Mycorrhizal fungi,AM)的分支 | 第8-9页 |
| 1.1.3 独脚金内酯是一类具有生物学活性的植物激素 | 第9-12页 |
| 1.2. 植物分枝的调控 | 第12-17页 |
| 1.2.1 植物分枝的产生 | 第12-13页 |
| 1.2.2 生长素对于分枝的调控作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3 细胞分裂素对于分枝的调控作用 | 第14-15页 |
| 1.2.4 独脚金内酯对于分枝的调控作用 | 第15页 |
| 1.2.5 三种激素之间的相互关系 | 第15-17页 |
| 1.3 独脚金内酯信号元件的发现及信号通路的确立 | 第17-19页 |
| 1.3.1 SL受体的发现 | 第17-18页 |
| 1.3.2 MAX2是SL信号通路中一个重要的元件 | 第18页 |
| 1.3.3 MAX2底物的发现 | 第18-19页 |
| 1.4 BR信号转导途径的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.4.1 BR信号在细胞内的转导 | 第19-22页 |
| 1.4.2 BR信号调控基因表达的关键转录因子 | 第22-24页 |
| 第二章 引言 | 第24-25页 |
| 第三章 材料与方法 | 第25-39页 |
| 3.1 实验材料 | 第25-28页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 3.1.2 载体质粒 | 第25-26页 |
| 3.1.3 菌株 | 第26页 |
| 3.1.4 抗生素 | 第26页 |
| 3.1.5 工具酶及试剂盒 | 第26-27页 |
| 3.1.6 抗体 | 第27页 |
| 3.1.7 主要的化学试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.8 蛋白纯化介质 | 第28页 |
| 3.1.9 实验仪器 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-39页 |
| 3.2.1 植物材料的培养 | 第28-29页 |
| 3.2.2 植物激素处理 | 第29页 |
| 3.2.3 拟南芥的杂交 | 第29页 |
| 3.2.4 拟南芥基因组DNA的提取 | 第29-30页 |
| 3.2.5 反转录PCR | 第30页 |
| 3.2.6 荧光实时定量PCR(qRT-PCR)检测基因表达 | 第30-31页 |
| 3.2.7 载体的构建 | 第31页 |
| 3.2.8 大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第31-32页 |
| 3.2.9 质粒的提取 | 第32页 |
| 3.2.10 农杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第32-33页 |
| 3.2.11 农杆菌介导的拟南芥转化 | 第33页 |
| 3.2.12 酵母双杂交实验 | 第33-34页 |
| 3.2.13 激光共聚焦显微镜观察拟南芥茎部BES1-GFP蛋白的降解 | 第34页 |
| 3.2.14 融合蛋白的体外表达和纯化 | 第34-35页 |
| 3.2.15 免疫印迹分析BES1蛋白表达 | 第35页 |
| 3.2.16 半体内pull-down实验 | 第35-36页 |
| 3.2.17 免疫共沉淀实验 | 第36页 |
| 3.2.18 质谱鉴定MAX2互作蛋白 | 第36-37页 |
| 3.2.19 BES1泛素化实验 | 第37页 |
| 3.2.20 BES1的半体内降解实验 | 第37-38页 |
| 3.2.21 烟草叶片瞬时转化 | 第38-39页 |
| 第四章 结果与分析 | 第39-55页 |
| 4.1 BES1相关突变体的初级分枝数目发生改变 | 第39-40页 |
| 4.2 bes1-D表现出对SL的不敏感 | 第40-41页 |
| 4.3 BR上游元件并不参与SL所介导的植物分枝调控 | 第41-42页 |
| 4.4 MAX2互作蛋白的鉴定 | 第42-43页 |
| 4.5 MAX2与BES1蛋白家族的互作 | 第43-45页 |
| 4.6 BES1与MAX2互作区段的确认 | 第45-46页 |
| 4.7 MAX2介导着BES1蛋白的泛素化 | 第46-47页 |
| 4.8 MAX2介导着BES1蛋白的降解 | 第47-48页 |
| 4.9 GR24不影响MAX2与BES1的互作强度 | 第48-49页 |
| 4.10 GR24促进依赖于MAX2的BES1的降解 | 第49-51页 |
| 4.11 MAX2介导着BZR1蛋白的降解 | 第51-52页 |
| 4.12 AtD14参与BES1蛋白的降解过程 | 第52-53页 |
| 4.13 MAX2与BESl的上位性分析 | 第53页 |
| 4.14 SL的信号转导模型 | 第53-55页 |
| 第五章 讨论 | 第55-59页 |
| 5.1 BES1作为MAX2的直接底物参与SL所介导的分枝调控 | 第55-56页 |
| 5.2 BES1通过不同的方式参与到两种信号途径中 | 第56-57页 |
| 5.3 BZR1也是MAX2的底物 | 第57页 |
| 5.4 karrikin与SL信号通路之间的关系 | 第57-59页 |
| 第六章 结论和展望 | 第59-60页 |
| 6.1 研究特色与创新之处 | 第59页 |
| 6.2 结论 | 第59页 |
| 6.3 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-72页 |
| 附录 | 第72-83页 |
| 附录1 本论文中用到的引物 | 第72-76页 |
| 附录2 常用试剂和缓冲液配方 | 第76-81页 |
| 附录3 常用培养基配方 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
