| 致谢 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 主要符号列表 | 第18-22页 |
| 1. 绪论 | 第22-50页 |
| 1.1 食源性致病菌 | 第22-26页 |
| 1.2 生物传感器 | 第26-39页 |
| 1.2.1 检测致病菌的不同方法 | 第26-29页 |
| 1.2.2 生物传感器 | 第29-39页 |
| 1.3 基于细胞的生物传感器 | 第39-46页 |
| 1.3.1 基于哺乳动物细胞的检测系统 | 第39-40页 |
| 1.3.2 基于细胞检测食源性致病菌 | 第40-44页 |
| 1.3.3 CBBs的局限性 | 第44-46页 |
| 1.4 本文研究对象与内容 | 第46-50页 |
| 1.4.1 研究对象 | 第46-47页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第47-48页 |
| 1.4.3 研究目标 | 第48页 |
| 1.4.4 技术路线 | 第48-50页 |
| 2. B细胞和B. coli O157：H7的相互作用 | 第50-66页 |
| 2.1 引言 | 第50-51页 |
| 2.2 材料和方法 | 第51-55页 |
| 2.2.1 试验试剂 | 第51-52页 |
| 2.2.2 细胞培养和生长曲线 | 第52页 |
| 2.2.3 细菌菌株和培养条件 | 第52-53页 |
| 2.2.4 ELISA | 第53页 |
| 2.2.5 B细胞对细菌捕获 | 第53页 |
| 2.2.6 细菌对B细胞凋亡的影响 | 第53-54页 |
| 2.2.7 统计学分析 | 第54-55页 |
| 2.3 结果 | 第55-62页 |
| 2.3.1 B细胞的生长 | 第55页 |
| 2.3.2 ELISA | 第55-56页 |
| 2.3.3 B细胞对细菌的捕获 | 第56-58页 |
| 2.3.4 细菌对B细胞凋亡的影响 | 第58-62页 |
| 2.4 讨论 | 第62-64页 |
| 2.5 结论 | 第64-66页 |
| 3. 基于化学钙离子指示剂的B细胞生物传感器构建 | 第66-86页 |
| 3.1 引言 | 第66-70页 |
| 3.2 材料和方法 | 第70-74页 |
| 3.2.1 试验试剂 | 第70页 |
| 3.2.2 细胞培养条件 | 第70-71页 |
| 3.2.3 细菌菌株和培养条件 | 第71-72页 |
| 3.2.4 扫描电镜成像 | 第72页 |
| 3.2.5 B细胞生物传感器的制备 | 第72页 |
| 3.2.6 纯培养物中E.coli O157：H7的检测 | 第72-73页 |
| 3.2.7 牛肉样品中E.coli O157：H7的检测 | 第73页 |
| 3.2.8 统计学分析 | 第73-74页 |
| 3.3 结果 | 第74-82页 |
| 3.3.1 B细胞生物传感器的优化 | 第74-76页 |
| 3.3.2 纯培养物中E.coli O157：H7的检测 | 第76-80页 |
| 3.3.3 食品样品中E.coli O157：H7的检测 | 第80-82页 |
| 3.4 讨论 | 第82-85页 |
| 3.5 结论 | 第85-86页 |
| 4 基于遗传工程钙离子指示剂的B细胞生物传感器构建 | 第86-104页 |
| 4.1 引言 | 第86-89页 |
| 4.2 材料和方法 | 第89-93页 |
| 4.2.1 试验试剂 | 第89-90页 |
| 4.2.2 细胞培养和转染条件 | 第90页 |
| 4.2.3 细菌菌株和培养条件 | 第90-91页 |
| 4.2.4 扫描电镜成像 | 第91页 |
| 4.2.5 FRET试验 | 第91-92页 |
| 4.2.6 细菌的检测 | 第92页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第92-93页 |
| 4.3 结果 | 第93-99页 |
| 4.3.1 质粒的验证与转染 | 第93-94页 |
| 4.3.2 B细胞和细菌的相互作用的扫描电镜成像 | 第94-95页 |
| 4.3.3 受体光漂白技术对FRET的研究 | 第95-97页 |
| 4.3.4 细菌的检测 | 第97-99页 |
| 4.4 讨论 | 第99-102页 |
| 4.5 结论 | 第102-104页 |
| 5. 结论与展望 | 第104-108页 |
| 5.1 研究结论 | 第104-105页 |
| 5.2 创新点 | 第105页 |
| 5.3 展望 | 第105-108页 |
| 参考文献 | 第108-120页 |
| 作者简介 | 第120-121页 |
