| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略词(Abbreviations) | 第12-14页 |
| 引言 | 第14-17页 |
| 第一章 腺病毒的扩增、纯化以及病毒滴度的测定 | 第17-27页 |
| 1 实验材料 | 第17-19页 |
| 1.1 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.2 主要试剂 | 第18页 |
| 1.3 腺病毒表达载体 | 第18页 |
| 1.4 实验细胞 | 第18页 |
| 1.5 试剂配制 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.1 细胞培养 | 第19-20页 |
| 2.2 重组腺病毒的扩增 | 第20页 |
| 2.3 重组腺病毒的纯化与浓缩 | 第20-21页 |
| 2.4 病毒滴度的测定——绿色荧光蛋白标记法[32] | 第21-22页 |
| 3 实验结果 | 第22-23页 |
| 4 讨论 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-27页 |
| 第二章 成年大鼠心肌细胞的分离和培养 | 第27-37页 |
| 1 实验材料 | 第28-30页 |
| 1.1 实验动物 | 第28页 |
| 1.2 主要仪器 | 第28页 |
| 1.3 主要试剂 | 第28-29页 |
| 1.4 试剂配制 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-33页 |
| 2.1 溶液的准备 | 第30-31页 |
| 2.2 成年大鼠心肌细胞的分离与培养的操作步骤[2] | 第31-32页 |
| 2.3 成年大鼠心肌细胞收缩功能检测 | 第32-33页 |
| 3 实验结果 | 第33-34页 |
| 3.1 分离获得的成年大鼠心肌细胞的形态学观察 | 第33-34页 |
| 3.2 成年大鼠心肌细胞舒缩功能检测 | 第34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-37页 |
| 第三章 PrxII过表达对LPS诱导心肌细胞损伤的保护作用 | 第37-67页 |
| 1 实验材料 | 第37-41页 |
| 1.1 主要仪器 | 第37-38页 |
| 1.2 主要试剂 | 第38-39页 |
| 1.3 实验细胞 | 第39页 |
| 1.4 试剂配制 | 第39-41页 |
| 2 实验方法 | 第41-48页 |
| 2.1 LPS诱导心肌细胞损伤的浓度 | 第41页 |
| 2.2 腺病毒中介的PrxII在心肌细胞中过表达的验证 | 第41-42页 |
| 2.3 MTT法检测心肌细胞活力 | 第42页 |
| 2.4 炎症模型的构建 | 第42页 |
| 2.5 上清液中乳酸脱氢酶（LDH）的检测 | 第42-44页 |
| 2.6 Western blot检测相关蛋白的表达 | 第44-48页 |
| 3 实验结果 | 第48-53页 |
| 3.1 LPS诱导心肌细胞损伤浓度的确定 | 第48-49页 |
| 3.2 Western Blot验证腺病毒中介的PrxII在心肌细胞中过表达 | 第49-50页 |
| 3.3 MTT法检测心肌细胞活力 | 第50-51页 |
| 3.4 PrxII过表达对心肌细胞中NF-κB通路中相关蛋白的影响 | 第51-52页 |
| 3.5 PrxII对LPS诱导的心肌细胞凋亡的影响 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-61页 |
| 4.1 重组腺病毒的应用 | 第53-54页 |
| 4.2 炎症反应的机理 | 第54-55页 |
| 4.3 内毒素血症对心脏的影响 | 第55-56页 |
| 4.4 PrxII对心脏的保护作用 | 第56-57页 |
| 4.5 NF-κB/P65对炎症反应的调控 | 第57-59页 |
| 4.6 凋亡 | 第59-60页 |
| 4.7 LDH | 第60-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 个人简历 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
