| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略语表 | 第14-15页 |
| 1 文献综述 | 第15-31页 |
| 1.1 土壤磷分布状况与利用现状 | 第15-16页 |
| 1.2 植物磷营养及其生理功能 | 第16-18页 |
| 1.3 植物适应低磷胁迫的机制 | 第18-22页 |
| 1.3.1 形态学适应 | 第18-19页 |
| 1.3.2 根系分泌物对土壤磷的活化 | 第19-21页 |
| 1.3.3 植物体内磷的再利用 | 第21页 |
| 1.3.4 植物适应低磷胁迫的分子机理 | 第21-22页 |
| 1.4 植物蛋白组学研究现状 | 第22-29页 |
| 1.4.1 蛋白质组学概念及其发展 | 第22-23页 |
| 1.4.2 蛋白质组学相关研究技术 | 第23-26页 |
| 1.4.3 国内外植物蛋白质组学研究现状 | 第26-28页 |
| 1.4.4 甘蓝型油菜蛋白质组学研究现状 | 第28-29页 |
| 1.5 比较基因组学研究进展 | 第29-31页 |
| 2. 研究的意义、目的和内容 | 第31-34页 |
| 2.1 研究意义 | 第31页 |
| 2.2 研究目的 | 第31-32页 |
| 2.3 研究内容 | 第32-33页 |
| 2.4 技术路线 | 第33-34页 |
| 3. 长期低磷胁迫下可溶性总蛋白的分离鉴定 | 第34-56页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-39页 |
| 3.1.1 试验材料培养 | 第34页 |
| 3.1.2 生物量及磷含量测定 | 第34-35页 |
| 3.1.3 可溶性总蛋白的抽提与定量 | 第35-36页 |
| 3.1.4 蛋白质双向电泳 | 第36-37页 |
| 3.1.5 凝胶胶图染色与图像分析 | 第37-38页 |
| 3.1.6 差异蛋白质点切取与酶解 | 第38页 |
| 3.1.7 质谱分析与数据库检索 | 第38-39页 |
| 3.2 结果与分析 | 第39-55页 |
| 3.2.1 长期低磷胁迫对生物量及磷相关性状的影响 | 第39-42页 |
| 3.2.2 长期低磷胁迫下的双向电泳图谱分析 | 第42-44页 |
| 3.2.3 长期低磷胁迫下差异蛋白质谱鉴定 | 第44-55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-56页 |
| 4. 短期无磷饥饿下可溶性总蛋白的分离鉴定 | 第56-73页 |
| 4.1 材料与方法 | 第56-57页 |
| 4.1.1 试验材料培养 | 第56页 |
| 4.1.2 生物量及磷含量测定 | 第56页 |
| 4.1.3 可溶性总蛋白的抽提与定量 | 第56-57页 |
| 4.1.4 蛋白质双向电泳 | 第57页 |
| 4.1.5 凝胶胶图染色与图像分析 | 第57页 |
| 4.1.6 差异蛋白质点切取与酶解 | 第57页 |
| 4.1.7 质谱分析与数据库检索 | 第57页 |
| 4.2 结果与分析 | 第57-72页 |
| 4.2.1 短期无磷饥饿对生物量及磷相关性状的影响 | 第57-61页 |
| 4.2.2 短期无磷饥饿下的双向电泳图谱分析 | 第61-62页 |
| 4.2.3 短期无磷饥饿下差异蛋白质谱鉴定 | 第62-72页 |
| 4.3 讨论 | 第72-73页 |
| 5. 磷缺乏诱导的差异蛋白功能分析 | 第73-80页 |
| 5.1 材料与方法 | 第73页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第73页 |
| 5.1.2 功能注释与代谢图谱构建 | 第73页 |
| 5.2 结果分析与讨论 | 第73-80页 |
| 5.2.1 不同磷效率基因型间差异蛋白的比较 | 第73-76页 |
| 5.2.2 碳水化合物及能量代谢 | 第76-78页 |
| 5.2.3 抗逆与防御反应相关蛋白 | 第78-79页 |
| 5.2.4 氨基酸及脂肪酸代谢、蛋白翻译与降解 | 第79-80页 |
| 6. 磷胁迫下抗氧化反应的差异分析 | 第80-92页 |
| 6.1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第80页 |
| 6.1.2 试验设计 | 第80页 |
| 6.1.3 超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第80-81页 |
| 6.1.4 过氧化氢酶（CAT）活性测定 | 第81页 |
| 6.1.5 抗坏血酸过氧化物酶（APX）活性测定 | 第81页 |
| 6.1.6 愈创木酚过氧化物酶（GPX）活性测定 | 第81页 |
| 6.1.7 谷胱甘肽还原酶（GR）活性测定 | 第81-82页 |
| 6.1.8 膜脂过氧化分析 | 第82页 |
| 6.1.9 超氧阴离子（O_2）及过氧化氢（H_2O_2）测定 | 第82-83页 |
| 6.2 结果与分析 | 第83-89页 |
| 6.2.1 不同磷处理对根系和叶片的膜脂过氧化的影响 | 第83-84页 |
| 6.2.2 不同磷处理对根系及叶片中O_2和H_2O_2 的影响 | 第84-85页 |
| 6.2.3 短期无磷饥饿对抗氧化酶活性的影响 | 第85-87页 |
| 6.2.4 长期低磷胁迫对抗氧化酶活性的影响 | 第87-89页 |
| 6.4 讨论 | 第89-92页 |
| 7. 短期无磷饥饿处理下根系质膜蛋白质组学浅析 | 第92-112页 |
| 7.1 材料与方法 | 第92-98页 |
| 7.1.1 试验材料培养 | 第92页 |
| 7.1.2 生物量及磷含量测定 | 第92-93页 |
| 7.1.3 伤流的测定 | 第93页 |
| 7.1.4 质膜的分离 | 第93-96页 |
| 7.1.5 质膜纯度的检测 | 第96-97页 |
| 7.1.6 质膜蛋白的提取与label-free鉴定 | 第97-98页 |
| 7.2 结果与分析 | 第98-110页 |
| 7.2.1 短期无磷饥饿下的生理性状分析 | 第98-100页 |
| 7.2.2 短期无磷饥饿下伤流液分析 | 第100-101页 |
| 7.2.3 质膜分离体系的优化 | 第101-103页 |
| 7.2.4 质膜蛋白的分析 | 第103-110页 |
| 7.3 讨论 | 第110-112页 |
| 8. 差异蛋白的图谱定位 | 第112-127页 |
| 8.1 材料与方法 | 第112-113页 |
| 8.1.1 试验材料 | 第112页 |
| 8.1.2 比较基因组学作图 | 第112-113页 |
| 8.2 结果与分析 | 第113-125页 |
| 8.2.1 2-DE 检测的差异蛋白在遗传图谱上的定位 | 第113页 |
| 8.2.2 Label-free检测的差异蛋白在遗传图谱上的定位 | 第113-125页 |
| 8.3 讨论 | 第125-127页 |
| 9.候选基因的表达分析 | 第127-133页 |
| 9.1 材料与方法 | 第127-130页 |
| 9.1.1 试验材料 | 第127-128页 |
| 9.1.2 RNA的提取及测定 | 第128-129页 |
| 9.1.3 引物设计及q PCR | 第129-130页 |
| 9.1.4 数据分析 | 第130页 |
| 9.2 结果与分析 | 第130-132页 |
| 9.3 讨论 | 第132-133页 |
| 10.研究总结与展望 | 第133-136页 |
| 10.1 研究总结 | 第133-134页 |
| 10.2 本研究的主要创新点 | 第134-135页 |
| 10.3 本研究不足之处 | 第135页 |
| 10.4 研究展望 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-157页 |
| 致谢 | 第157-158页 |
| 作者简介 | 第158页 |
| 在读期间发表论文 | 第158-159页 |
| 会议摘要 | 第159-160页 |
