摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
缩略词表 | 第11-12页 |
1 综述 | 第12-30页 |
1.1 棉花的色素腺体与棉酚的相关研究 | 第12-17页 |
1.1.1 棉花色素腺体的特征与分类维度 | 第12-13页 |
1.1.2 棉酚的结构与特性 | 第13-14页 |
1.1.3 棉酚合成途径的研究 | 第14-16页 |
1.1.4 棉酚的特点及研究的意义 | 第16-17页 |
1.2 国内外低酚棉育种的研究进展 | 第17-20页 |
1.2.1 国外低酚棉育种进展 | 第17-18页 |
1.2.2 我国低酚棉育种进展 | 第18-20页 |
1.2.3 低酚棉育种新进展 | 第20页 |
1.3 决定棉花腺体的相关基因研究 | 第20-23页 |
1.3.1 棉花色素腺体有关基因的遗传分析 | 第20-22页 |
1.3.2 棉花色素腺体相关复等位基因的遗传研究 | 第22-23页 |
1.4 显性无腺体基因Gl_2~e的遗传分析与研究进展 | 第23-25页 |
1.4.1 显性无腺体基因Gl_2~e的发现与初步研究 | 第23-25页 |
1.4.2 显性无腺体基因Gl_2~e的遗传分析与深入研究 | 第25页 |
1.5 基因精细定位技术 | 第25-28页 |
1.5.1 分子标记技术 | 第25-27页 |
1.5.2 图位克隆技术与作图群体 | 第27-28页 |
1.6 基因芯片技术 | 第28-29页 |
1.6.1 基因芯片的测序原理 | 第28页 |
1.6.2 基因芯片的应用和发展 | 第28-29页 |
1.7 研究目的 | 第29-30页 |
2 材料与方法 | 第30-40页 |
2.1 亲本材料 | 第30页 |
2.2 氧化还原酶活性的测定 | 第30-32页 |
2.2.1 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第30-31页 |
2.2.2 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第31页 |
2.2.3 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第31-32页 |
2.3 群体构建与田间调查 | 第32-33页 |
2.4 棉花色素腺体基因表达谱分析 | 第33-37页 |
2.4.1 棉花总RNA的提取 | 第33页 |
2.4.2 棉花基因芯片的制备 | 第33-36页 |
2.4.3 荧光定量PCR | 第36-37页 |
2.5 关于目的基因定位的SSR分析 | 第37-40页 |
2.5.1 棉花DNA的提取 | 第37-38页 |
2.5.2 BSA分池方法 | 第38页 |
2.5.3 SSR引物的来源 | 第38-39页 |
2.5.4 变性PAGE凝胶的制备 | 第39页 |
2.5.5 变性PAGE凝胶的电泳 | 第39-40页 |
2.5.6 银染 | 第40页 |
2.5.7 实验结果的记录 | 第40页 |
2.5.8 连锁图谱的构建 | 第40页 |
3 结果与分析 | 第40-56页 |
3.1 两亲本腺体性状表现和生理特征 | 第40-44页 |
3.2 显性无腺体性状的遗传分析 | 第44页 |
3.3 腺体形成基因表达谱分析 | 第44-52页 |
3.3.1 总RNA电泳结果 | 第44-45页 |
3.3.2 芯片质量与杂交结果可靠性分析 | 第45页 |
3.3.3 差异基因的筛选与基因功能分类研究 | 第45-47页 |
3.3.4 棉花腺体发育代谢途径基因分析 | 第47-50页 |
3.3.5 芯片可靠性的验证 | 第50-52页 |
3.4 显性无腺体基因Gl_2~e的初步定位 | 第52页 |
3.5 显性无腺体基因Gl_2~e的精细定位 | 第52-56页 |
4 分析与讨论 | 第56-60页 |
4.1 显性无腺体基因Gl_2~e的精确定位 | 第56页 |
4.2 基因组SSR和表达序列标签SSR的比较 | 第56-57页 |
4.3 色素腺体形成相关基因的分析 | 第57-60页 |
参考文献 | 第60-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
附录 | 第70-72页 |