| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 中英文对照及英文缩写表 | 第6-9页 |
| 第一章 前言 | 第9-17页 |
| 1.1 TRAIL概述 | 第9-14页 |
| 1.1.1 TRAIL分子简介 | 第9-10页 |
| 1.1.2 TRAIL的生物学活性 | 第10-11页 |
| 1.1.3 TRAIL受体 | 第11-12页 |
| 1.1.4 TRAIL信号转导 | 第12-13页 |
| 1.1.5 TRAIL的敏感性和抗性 | 第13-14页 |
| 1.2 衣霉素简介 | 第14-15页 |
| 1.3 本论文立题依据、研究内容及意义 | 第15-17页 |
| 第二章 衣霉素增强结肠癌细胞对TRAIL敏感性的研究 | 第17-29页 |
| 2.1 材料、试剂与仪器 | 第17-20页 |
| 2.1.1 材料 | 第17页 |
| 2.1.2 试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.3 仪器 | 第18-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第20页 |
| 2.2.2 MTT实验 | 第20-21页 |
| 2.2.3 流式细胞术检测细胞凋亡实验 | 第21页 |
| 2.2.4 western-blot实验 | 第21-22页 |
| 2.2.5 统计学分析 | 第22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-27页 |
| 2.3.1 衣霉素增强TRAIL对结肠癌细胞增殖的抑制作用 | 第22-24页 |
| 2.3.2 衣霉素增强TRAIL诱导的结肠癌细胞凋亡 | 第24-26页 |
| 2.3.3 衣霉素增强TRAIL诱导结肠癌细胞发生caspase途径依赖的细胞凋亡 | 第26-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 2.5 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 衣霉素增强结肠癌细胞对TRAIL敏感性机制的研究 | 第29-40页 |
| 3.1 材料、试剂与仪器 | 第29页 |
| 3.1.1 材料 | 第29页 |
| 3.1.2 试剂 | 第29页 |
| 3.1.3 仪器 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.2.1 Western-blot实验 | 第29页 |
| 3.2.2 RT-PCR实验 | 第29-31页 |
| 3.2.3 siRNA实验 | 第31页 |
| 3.2.4 MTT实验 | 第31页 |
| 3.3 实验结果 | 第31-38页 |
| 3.3.1 衣霉素上调TRAIL受体DR5蛋白的表达并抑制受体DR4糖基化 | 第31-32页 |
| 3.3.2 衣霉素在转录水平上上调受体DR5 mRNA的表达量 | 第32页 |
| 3.3.3 DR5在衣霉素增强结肠癌细胞对TRAIL敏感性中起重要作用 | 第32-34页 |
| 3.3.4 衣霉素通过影响CHOP的表达上调受体DR5的表达 | 第34-36页 |
| 3.3.5 衣霉素通过激活JNK信号通路促进CHOP的表达 | 第36-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-39页 |
| 3.5 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 衣霉素抑制蛋白糖基化增强TRAIL诱导结肠癌细胞凋亡机制的初步探究 | 第40-45页 |
| 4.1 材料、试剂与仪器 | 第40页 |
| 4.1.1 材料 | 第40页 |
| 4.1.2 试剂 | 第40页 |
| 4.1.3 仪器 | 第40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 Western-blot实验 | 第40页 |
| 4.2.2 免疫共沉淀实验 | 第40-41页 |
| 4.3 实验结果 | 第41-43页 |
| 4.3.1 衣霉素抑制EGFR糖基化水平进而影响ERK和Akt信号通路 | 第41-42页 |
| 4.3.2 结肠癌细胞EGFR与TRAIL受体DR4和DR5没有直接相互作用 | 第42-43页 |
| 4.4 讨论 | 第43-44页 |
| 4.5 小结 | 第44-45页 |
| 全文总结 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 在读期间发表论文及著作情况 | 第52页 |
