| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 引言 | 第8-26页 |
| 1.1 血管内皮细胞的结构和极性特征 | 第8-11页 |
| 1.1.1 内皮细胞顶端膜特征 | 第9-10页 |
| 1.1.2 内皮细胞侧底端膜特征 | 第10页 |
| 1.1.3 内皮细胞的其他极性特征和极性应答 | 第10-11页 |
| 1.2 极化细胞的蛋白分选 | 第11-13页 |
| 1.2.1 顶生途径 | 第11-12页 |
| 1.2.2 侧底生途径 | 第12-13页 |
| 1.3 跨内皮细胞的物质运输 | 第13-16页 |
| 1.3.1 旁细胞途径 | 第13-14页 |
| 1.3.2 跨细胞转运途径 | 第14-16页 |
| 1.4 C反应蛋白与心血管疾病 | 第16-22页 |
| 1.4.1 C反应蛋白的结构和研究历史 | 第16-17页 |
| 1.4.2 CRP五聚体解聚成单体CRP | 第17-18页 |
| 1.4.3 动脉硬化小鼠模型中CRP的功能 | 第18-19页 |
| 1.4.4 CRP与动脉粥样硬化 | 第19-20页 |
| 1.4.5 CRP与心肌梗死 | 第20-21页 |
| 1.4.6 以CRP作为靶点的治疗 | 第21-22页 |
| 1.5 本文的选题依据及研究意义 | 第22-23页 |
| 1.6 实验方法和技术路线 | 第23-24页 |
| 1.7 希望解决的问题 | 第24-26页 |
| 第二章 材料及方法 | 第26-44页 |
| 2.1 重组mCRP的制备和纯化 | 第26-27页 |
| 2.2 人冠状动脉内皮细胞的培养 | 第27-29页 |
| 2.3 Millicell上细胞单层的培养 | 第29-32页 |
| 2.4 跨细胞电阻的测量 | 第32-33页 |
| 2.5 Western Blot实验 | 第33-35页 |
| 2.6 内皮细胞总RNA提取 | 第35-36页 |
| 2.7 荧光定量PCR检测细胞因子 | 第36-37页 |
| 2.8 酶联免疫吸附 | 第37-38页 |
| 2.9 荧光共聚焦成像 | 第38-39页 |
| 2.10 流式细胞实验 | 第39-40页 |
| 2.11 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第40-43页 |
| 2.12 小鼠静脉注射和检测 | 第43-44页 |
| 第三章 血管内皮细胞对mCRP的极性应答 | 第44-50页 |
| 3.1 用于极性实验的ECs monolayer | 第44-45页 |
| 3.2 内皮细胞对mCRP的极性应激 | 第45-47页 |
| 3.3 mCRP透过Millicell-CM膜的检测 | 第47-50页 |
| 第四章 血管内皮细胞对其他促炎分子的极性或非极性应答 | 第50-62页 |
| 4.1 内皮细胞对各类促炎因子在基因和总细胞因子释放水平的极性或非极性应答 | 第50-52页 |
| 4.2 内皮细胞对PMA的极性应答 | 第52-53页 |
| 4.3 内皮细胞对脂多糖的极性应答 | 第53-62页 |
| 第五章 mCRP通过脂筏激活内皮细胞及脂筏在细胞膜的不对称分布 | 第62-68页 |
| 5.1 破坏脂筏结构可以抑制mCRP激活内皮细胞 | 第63页 |
| 5.2 脂筏在HCAEC膜表面的不对称分布 | 第63-65页 |
| 5.3 mCRP与HCAEC不同极性面的结合实验 | 第65-68页 |
| 第六章 mCRP激活内皮细胞的胞内信号通路 | 第68-78页 |
| 6.1 研究背景 | 第68-73页 |
| 6.2 mCRP激活内皮细胞可能的信号通路抑制剂筛选 | 第73-75页 |
| 6.3 PLC信号通路 | 第75-76页 |
| 6.4 NF-κB信号通路 | 第76-77页 |
| 6.5 p38 MAPK信号通路 | 第77-78页 |
| 第七章 CRP的跨内皮细胞转运 | 第78-86页 |
| 7.1 研究背景 | 第78-79页 |
| 7.2 CRP跨人主动脉内皮细胞的运输 | 第79-82页 |
| 7.3 CRP穿胞转运的条件控制 | 第82-84页 |
| 7.4 高血糖条件下CRP的跨内皮转运 | 第84-86页 |
| 第八章 结果与讨论 | 第86-91页 |
| 参考文献 | 第91-103页 |
| 在学期间的研究成果 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
