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借助特异性探针药物研究双峰驼CYP2D6酶体外活性

摘要第4-6页
abstract第6-7页
1 前言第12-19页
    1.1 国内双峰驼研究现状第12-13页
    1.2 国外双峰驼研究现状第13页
    1.3 CYP酶研究现状第13-17页
        1.3.1 CYP酶概述第13-14页
        1.3.2 几种主要CYP酶第14-16页
        1.3.3 CYP2D_6酶概述第16-17页
    1.4 CYP酶活性研究方法第17-18页
        1.4.1 体内研究方法第17页
        1.4.2 体外研究方法第17-18页
    1.5 试验目的与意义第18-19页
2 实验材料第19-20页
    2.1 实验肝脏第19页
    2.2 实验仪器第19页
    2.3 实验试剂第19-20页
3 实验方法第20-26页
    3.1 制备双峰驼肝微粒体第20页
    3.2 测定双峰驼肝微粒体蛋白浓度第20-21页
        3.2.1 绘制BCA蛋白标准曲线及测定样品蛋白浓度第20页
        3.2.2 考察BCA试剂盒精密度、标准蛋白样品稳定性及回收率第20-21页
    3.3 测定双峰驼肝微粒体CYP总酶含量及Cytb_5含量第21页
        3.3.1 测定双峰驼肝微粒体CYP总酶含量第21页
        3.3.2 测定双峰驼肝微粒体Cytb_5含量第21页
    3.4 建立CYP2D_6酶特异性底物及其产物的HPLC检测方法第21-24页
        3.4.1 确定色谱条件第22页
        3.4.2 配制标准品溶液第22页
        3.4.3 绘制产物去甲右美沙芬标准曲线第22页
        3.4.4 绘制底物氢溴酸右美沙芬标准曲线第22-23页
        3.4.5 建立双峰驼肝微粒体孵育体系第23-24页
        3.4.6 双峰驼CYP2D_6酶动力学特征研究第24页
        3.4.7 研究双峰驼CYP2D_6酶对底物氢溴酸右美沙芬的代谢率第24页
    3.5 考察奎尼丁对双峰驼CYP2D_6酶活性的影响第24-26页
        3.5.1 奎尼丁对双峰驼CYP2D6酶活性的抑制作用第24-25页
        3.5.2 奎尼丁对双峰驼CYP2D6酶抑制的时间依赖性第25页
        3.5.3 奎尼丁对双峰驼CYP2D6酶的IC50值第25-26页
4 实验结果与分析第26-42页
    4.1 双峰驼肝微粒体蛋白浓度测定结果第26-28页
        4.1.1 绘制BCA标准曲线第26页
        4.1.2 双峰驼肝微粒体蛋白浓度测定结果第26页
        4.1.3 BCA试剂盒精密度考察结果第26-27页
        4.1.4 BCA稳定性及相对回收率考察结果第27-28页
    4.2 双峰驼CYP总酶含量测定结果第28页
    4.3 双峰驼Cytb_5含量测定结果第28页
    4.4 双峰驼CYP2D6酶对特异性底物代谢活性的研究结果第28-39页
        4.4.1 色谱条件专属性考察第28-30页
        4.4.2 去甲右美沙芬标准曲线的制作与方法学考察第30-32页
        4.4.3 氢溴酸右美沙芬标准曲线的制作第32-33页
        4.4.4 双峰驼肝微粒体孵育体系优化结果第33-35页
        4.4.5 双峰驼CYP2D_6酶活性测定结果第35-38页
        4.4.6 氢溴酸右美沙芬代谢率研究结果第38-39页
    4.5 奎尼丁对双峰驼CYP2D_6酶活性的抑制作用第39-42页
        4.5.1 奎尼丁抑制作用对时间依赖性的结果第39-40页
        4.5.2 计算奎尼丁对双峰驼CYP2D_6酶的IC_(50)值第40-42页
5 讨论第42-46页
    5.1 实验动物肝脏的采集第42页
    5.2 动物肝微粒体的制备第42页
    5.3 肝微粒体蛋白浓度及CYP总酶含量的测定第42-43页
    5.4 肝微粒体孵育体系的优化第43页
    5.5 高效液相色谱条件的确定第43-44页
    5.6 CYP2D_6酶动力学参数的考察第44-45页
    5.7 奎尼丁对双峰驼CYP2D_6酶的抑制作用第45-46页
6 结论第46-47页
致谢第47-48页
参考文献第48-55页
作者简介第55页

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