NADPH氧化酶诱导H2O2与柑橘溃疡病菌部分互作研究
| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 縮略词表（Abbreviations) | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-24页 |
| 1 柑橘溃疡病研究进展 | 第14-17页 |
| ·柑橘溃疡病的症状 | 第15页 |
| ·柑橘溃疡病的病原 | 第15-16页 |
| ·柑橘溃疡病的发病规律 | 第16页 |
| ·柑橘品种对柑橘溃疡病的感病性分化 | 第16页 |
| ·柑橘溃疡病的防治 | 第16-17页 |
| 2 NADPH氧化酶简介 | 第17-19页 |
| ·已报道植物中NADPH氧化酶基因 | 第17页 |
| ·植物NADPH氧化酶基因的结构特点 | 第17-19页 |
| 3 NADPH氧化酶催化产生ROS | 第19页 |
| 4 H_2O_2与植物抗病性的关系 | 第19-24页 |
| ·病原胁迫下H_2O_2的积累 | 第19-20页 |
| ·H_2O_2的合成与代谢 | 第20页 |
| ·H_2O_2在植物抗病过程中的作用 | 第20-24页 |
| 第二章 引言 | 第24-26页 |
| 第三章 叶片离体接种后H_2O_2含量变化 | 第26-36页 |
| 1 试验材料 | 第26-27页 |
| ·供试材料 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26页 |
| ·常用储备液及缓冲液 | 第26-27页 |
| 2 试验方法 | 第27-28页 |
| ·H_2O_2对Xac的离体抑菌测定 | 第27页 |
| ·叶片的离体接种 | 第27页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-33页 |
| ·H_2O_2对Xac的离体抑菌测定 | 第28页 |
| ·叶片接种后发病症状 | 第28-30页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第30-33页 |
| 4 讨论 | 第33-34页 |
| ·H_2O_2对Xac的离体抑菌测定 | 第33页 |
| ·不同柑橘品种接种Xac后H_2O_2浓度的变化 | 第33-34页 |
| 5 小结 | 第34-36页 |
| 第四章 叶片离体接种后Xac菌量的变化 | 第36-48页 |
| 1 试验材料 | 第36-37页 |
| ·供试材料 | 第36页 |
| ·供试药剂 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| 2 试验方法 | 第37-39页 |
| ·叶片离体接种 | 第37页 |
| ·总RNA的提取 | 第37-38页 |
| ·引物序列 | 第38页 |
| ·Real time PCR | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-44页 |
| ·RNA纯度及完整性 | 第39-40页 |
| ·Real time PCR扩增 | 第40-44页 |
| 4 讨论 | 第44-45页 |
| 5 小结 | 第45-48页 |
| 第五章 叶片离体接种后rboh基因表达量的变化 | 第48-56页 |
| 1 实验材料 | 第48页 |
| ·供试材料 | 第48页 |
| ·供试药剂 | 第48页 |
| ·主要仪器 | 第48页 |
| 2 试验方法 | 第48-51页 |
| ·叶片离体接种 | 第48页 |
| ·总RNA的提取 | 第48页 |
| ·引物序列 | 第48-49页 |
| ·PCR扩增与克隆鉴定 | 第49-50页 |
| ·Real time PCR | 第50-51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-54页 |
| ·RNA纯度和完整性分析 | 第51页 |
| ·克隆鉴定 | 第51页 |
| ·Real time PCR扩增 | 第51-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| 5 小结 | 第55-56页 |
| 第六章 结论及展望 | 第56-58页 |
| 1 结论 | 第56-57页 |
| 2 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 硕士期间发表文章及参加科研项日情况 | 第66-68页 |
| 附录 | 第68页 |
