| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-21页 |
| ·龙胆简介 | 第11页 |
| ·龙胆属植物的研究现状 | 第11-12页 |
| ·植物多糖研究概况 | 第12-13页 |
| ·植物多糖的生物活性与应用 | 第13-16页 |
| ·植物多糖的免疫调节和抗肿瘤活性 | 第13-14页 |
| ·植物多糖的抗氧化、抗衰老活性 | 第14-15页 |
| ·植物多糖的降血脂、降血糖活性 | 第15页 |
| ·植物多糖的抗病毒功能 | 第15页 |
| ·植物多糖的其他生物活性 | 第15-16页 |
| ·植物多糖提取、分离和纯化方法研究 | 第16-19页 |
| ·植物多糖的提取 | 第16-17页 |
| ·植物多糖的分离、纯化 | 第17-18页 |
| ·植物多糖的含量测定方法 | 第18页 |
| ·植物多糖的结构分析 | 第18-19页 |
| ·本文研究的内容、目的与意义 | 第19-21页 |
| ·研究内容 | 第19页 |
| ·研究目的和意义 | 第19-21页 |
| 2 龙胆水溶性多糖提取工艺的优化研究 | 第21-33页 |
| 引言 | 第21页 |
| ·实验材料与设备 | 第21页 |
| ·实验材 | 第21页 |
| ·实验设备 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-24页 |
| ·龙胆粗多糖（GSCP）的提取 | 第21-22页 |
| ·响应面法设计优化 GSCP 的提取工艺条件 | 第22-23页 |
| ·多糖含量的测定 | 第23-24页 |
| ·实验结果与分析 | 第24-31页 |
| ·提取次数对 GSCP 提取率的影响 | 第24页 |
| ·提取温度对 GSCP 提取率的影响 | 第24-25页 |
| ·提取时间对 GSCP 提取率的影响 | 第25-26页 |
| ·料液比对 GSCP 提取率的影响 | 第26-27页 |
| ·响应面分析法优化设计实验 | 第27-30页 |
| ·响应面等高线图和曲面图分析 | 第30-31页 |
| ·本章小结 | 第31-33页 |
| 3 龙胆多糖的分级纯化及各级分的表征分析 | 第33-49页 |
| 引言 | 第33页 |
| ·实验材料与设备 | 第33-34页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·实验试剂 | 第33页 |
| ·实验仪器与设备 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-39页 |
| ·除蛋白 | 第34页 |
| ·DEAE-CELLULOSE DE-52 离子交换层析 | 第34-35页 |
| ·SEPHAROSE CL-6B 凝胶层析 | 第35-36页 |
| ·多糖组分含量的测定 | 第36-38页 |
| ·多糖红外光谱分析 | 第38页 |
| ·多糖的单糖组成分析 | 第38页 |
| ·多糖的1HNMR 和13CNMR 核磁分析 | 第38-39页 |
| ·实验结果与讨论 | 第39-47页 |
| ·DEAE-CELLULOSE DE52 离子交换层析结果 | 第39-40页 |
| ·GSP I 和 GSP II 的 SEPHAROSE CL-6B 凝胶层析 | 第40-41页 |
| ·多糖的组成含量的测定分析 | 第41页 |
| ·GSPI-A 和 GSP II-B 的红外光谱分析 | 第41-43页 |
| ·GSPI-A 和 GSPII-B 的单糖组成分析 | 第43-45页 |
| ·GSPI-A 和 GSPII-B 的1HNMR 和13CNMR 核磁分析 | 第45-47页 |
| ·本章小结 | 第47-49页 |
| 4 龙胆多糖生物活性的测定分析 | 第49-59页 |
| 引言 | 第49页 |
| ·实验材料 | 第49-50页 |
| ·试剂与材料 | 第49页 |
| ·试剂的配制 | 第49-50页 |
| ·实验仪器 | 第50页 |
| ·实验部分 | 第50-53页 |
| ·体外抗氧化活性的测定 | 第50-53页 |
| ·体内抗肿瘤活性的研究 | 第53页 |
| ·实验结果与讨论 | 第53-57页 |
| ·GSP、GSPI-A 和 GSPII-B 体外抗氧化活性的测定 | 第53-56页 |
| ·GSP 的体内抗肿瘤活性的考察 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-59页 |
| 5 结论与展望 | 第59-61页 |
| ·结论 | 第59-60页 |
| ·展望 | 第60-61页 |
| 符号说明 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第73页 |
