首页--医药、卫生论文--中国医学论文--中药学论文--中药药理学论文--中药实验药理论文

冬凌草甲素诱导人喉鳞状细胞癌HEp-2细胞死亡机制研究

中文摘要第1-16页
英文摘要第16-19页
第一章 绪论第19-59页
 第一节 程序性细胞死亡的分子机制第19-38页
  一、细胞凋亡及其分子机制第19-32页
   1.细胞凋亡的概念及特征第19-20页
   2.细胞凋亡的一些调控因素第20-29页
   ·活性氧第20-21页
   ·Caspase蛋白酶第21-25页
     ·凋亡启动亚类caspases-9的调节作用第22-24页
     ·凋亡启动亚类caspases-8的调节作用第24-25页
     ·凋亡效应亚类caspase-3的调节作用第25页
   ·Bcl-2家族成员第25-27页
   ·凋亡诱导因子第27页
   ·p53蛋白第27-28页
   ·SIRT1去乙酰化酶第28-29页
   3.细胞凋亡的信号转导途径第29-31页
   ·线粒体途径第29-30页
   ·死亡受体途径第30-31页
   4.细胞凋亡与肿瘤第31-32页
  二、细胞自噬及其分子机制第32-38页
   1.自噬的概念及功能第32页
   2.自噬的分类第32-33页
   3.自噬的调控因素第33-34页
   ·Beclinl在自噬中的功能第33-34页
   ·MAP-LC3在自噬中的功能第34页
   ·PI3K对自噬通路的调控第34页
   4.自噬与凋亡第34-37页
   ·自噬与凋亡相互拮抗第35-36页
     ·抑制凋亡促进自噬第35页
     ·抑制自噬促进凋亡第35-36页
   ·自噬与凋亡相互促进第36页
   ·凋亡与自噬的共同调节因素第36-37页
     ·ROS、神经酰、Ca~(2+)第36页
     ·ATG5第36-37页
   5.自噬与肿瘤第37-38页
 第二节 细胞周期调控及其分子机制第38-42页
  1.细胞周期的概念第38页
  2.细胞周期调控分子第38-39页
  3.细胞周期检查点第39-41页
  4.细胞周期阻滞与凋亡第41-42页
  5.细胞周期与肿瘤第42页
 第三节 蛋白酪氨酸激酶信号转导途径及其相关研究第42-45页
  一、蛋白酪氨酸激酶的分类与功能第42-43页
  二、蛋白酪氨酸激酶细胞信号转导途径第43-44页
   1.受体酪氨酸激酶信号转导第43页
   2.非受体酪氨酸激酶信号转导第43-44页
  三、蛋白酪氨酸激酶信号转导途径与抗肿瘤药物第44-45页
 第四节 人喉鳞状细胞癌分子细胞遗传学研究进展第45-46页
  1.癌基因第45-46页
  2.抑癌基因第46页
 第五节 抗肿瘤药物研究进展第46-48页
 第六节 冬凌草甲素及其药理作用第48-50页
 参考文献第50-59页
第二章 冬凌草甲素通过产生活性氧及诱导凋亡与G2肿期阻滞抑制人喉鳞状细胞癌HEp-2细胞生长第59-86页
 一、实验材料与方法第59-64页
  1.实验材料第59-61页
   ·细胞第59-60页
   ·药品及试剂第60页
   ·仪器第60-61页
  2.实验方法第61-64页
   ·细胞培养第61页
   ·MTT法测定细胞生长抑制率第61页
   ·相差显微镜观察细胞形态第61页
   ·电镜观察细胞形态第61-62页
   ·AO染色观察细胞核损伤第62页
   ·线粒体膜电位观察第62页
   ·细胞内ROS含量测定第62页
   ·流式细胞术分析细胞周期及凋亡比率第62-63页
   ·Western blot免疫印迹法第63-64页
   ·数据统计分析第64页
 二、实验结果第64-76页
  1.冬凌草甲素对HEp-2细胞的生长抑制作用第64-65页
  2.冬凌草甲素诱导HEp-2细胞凋亡的形态学变化第65-66页
  3.流式细胞术测定冬凌草甲素诱导HEp-2细胞发生凋亡及G_2/M期阻滞第66-67页
  4.冬凌草甲素引起细胞内ROS早期产生,产生的ROS可介导细胞凋亡和周期阻滞第67-69页
  5.抑制ROS的产生可以挽救冬凌草甲素引起的线粒体膜电位的丧失第69-71页
  6.冬凌草甲素引起的Bax活化、Bcl-2降解以及cytochrome c、AIF表达量增加可被NAC或CAT所抑制第71-73页
  7.冬凌草甲素引起的caspase-3的剪切,ICAD的裂解可被NAC或CAT所抑制,而caspase-9前体的表达量没有发生变化第73-74页
  8.分析介导G_2/M周期阻滞的重要效应分子第74-76页
 三、讨论第76-79页
 四、小结第79-81页
 参考文献第81-86页
第三章 抑制EGFR信号途径增强冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞凋亡第86-114页
 一、实验材料与方法第86-90页
  1.实验材料第86-87页
   ·细胞第86页
   ·药品及试剂第86-87页
   ·仪器第87页
  2.实验方法第87-90页
   ·细胞培养第87-88页
   ·MTT法测定细胞生长抑制率第88页
   ·AO染色观察细胞核损伤第88页
   ·流式细胞术分析凋亡比率第88页
   ·细胞内ROS含量测定第88页
   ·线粒体膜电位观察第88页
   ·核提取物的制备第88-89页
   ·Western blot免疫印迹法第89-90页
   ·数据统计分析第90页
 二、实验结果第90-104页
  1.抑制EGFR信号途径增强冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞凋亡及生长抑制第90-93页
  2.抑制EGFR通过扩大ROS的产生增强冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞凋亡第93-95页
  3.抑制EGFR加剧冬凌草甲素诱导的线粒体膜电位丧失,而清除ROS可以明显阻止线粒体膜电位丧失第95-97页
  4.联合使用AG1478和冬凌草甲素对EGFR活性的影响第97-98页
  5.冬凌草甲素诱导的Bax激活,Bcl-2降解及SIRT1失活可被AG1478进一步增强,但被NAC抑制第98-100页
  6.抑制EGFR促进冬凌草甲素诱导的AIF核转位,而ROS参与调节此过程第100-101页
  7.冬凌草甲素引起的FADD的募集、caspase-8前体的剪切以及caspase-3的激活,可被AG1478促进,但被NAC抑制第101-102页
  8.抑制EGFR促进冬凌草甲素诱导的PARP、ICAD的裂解,而ROS参与调节此过程第102-104页
 三、讨论第104-107页
 四、小结第107-109页
 参考文献第109-114页
第四章 冬凌草甲素诱导人喉鳞状细胞癌HEp-2细胞凋亡过程中caspase-9保护性机制研究第114-148页
 一、实验材料与方法第114-120页
  1.实验材料第114-116页
   ·细胞第114-115页
   ·药品及试剂第115页
   ·仪器第115-116页
  2.实验方法第116-120页
   ·细胞培养第116页
   ·MTT法测定细胞生长抑制率第116页
   ·相差显微镜观察细胞形态第116页
   ·细胞内ROS含量测定第116页
   ·线粒体膜电位观察第116页
   ·流式细胞术分析凋亡比率第116-117页
   ·电镜观察细胞形态第117页
   ·荧光显微镜观察和流式细胞仪分析MDC荧光染色第117页
   ·AO染色观察细胞核损伤第117页
   ·线粒体和胞浆提取物的制备第117-118页
   ·Caspase-9活力测定第118页
   ·siRNA转染第118页
   ·Western blot免疫印迹法第118-119页
   ·数据统计分析第119-120页
 二、实验结果第120-140页
  1.Caspase对冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞生长抑制的调控作用第120-121页
  2.抑制caspase-9增强冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞凋亡第121-123页
  3.抑制caspase-9通过扩大ROS的产生增强冬凌草甲素诱导的HEp-2细胞凋亡第123-125页
  4.抑制caspase-9加剧冬凌草甲素诱导的线粒体膜电位丧失第125-127页
  5.冬凌草甲素诱导HEp-2细胞自噬第127-130页
  6.抑制自噬促进冬凌草甲素诱导的细胞凋亡第130-133页
  7.Caspase-9可增强冬凌草甲素诱导的细胞自噬第133-135页
  8.分析凋亡蛋白酶复合体相关蛋白的表达第135-136页
  9.Caspase-9在冬凌草甲素作用下被激活第136页
  10. Caspase-9缺陷的HEp-2细胞对冬凌草甲素敏感性增强第136-140页
 三、讨论第140-143页
 四、小结第143-145页
 参考文献第145-148页
缩略语说明第148-151页
致谢第151-152页
附录第152-171页

论文共171页,点击 下载论文
上一篇:丹参、人参标准提取物复方配伍在大鼠体内的药动学研究
下一篇:两种岭南中药的化学成分研究