| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 缩略词 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-32页 |
| ·问题的提出 | 第15-16页 |
| ·植物组织培养研究进展 | 第16-25页 |
| ·植物组织培养研究概况 | 第16-17页 |
| ·植物组织培养技术的应用 | 第17-18页 |
| ·快速繁殖种苗 | 第17页 |
| ·无病毒苗的培养 | 第17-18页 |
| ·培养远缘杂种,提高育种效率 | 第18页 |
| ·种质资源保存 | 第18页 |
| ·植物基因工程 | 第18页 |
| ·核果类果树组织培养 | 第18-24页 |
| ·茎尖培养 | 第19-20页 |
| ·叶片培养 | 第20-21页 |
| ·胚培养 | 第21-22页 |
| ·原生质体培养 | 第22-23页 |
| ·其他培养方式 | 第23-24页 |
| ·核果类果树组织培养存在的问题及解决方法 | 第24-25页 |
| ·植物miRNA的研究进展 | 第25-31页 |
| ·miRNA的发现 | 第25-26页 |
| ·miRNA的概念和特点 | 第26-27页 |
| ·概念 | 第26页 |
| ·特点 | 第26-27页 |
| ·miRNA的生物合成和作用机制 | 第27-28页 |
| ·miRNA生物的合成和加工成熟过程 | 第27页 |
| ·miRNA的作用机理 | 第27-28页 |
| ·植物miRNA功能的研究进展 | 第28-30页 |
| ·miRNA调控植物的生长发育 | 第28-29页 |
| ·miRNA调节植物激素及信号转导 | 第29页 |
| ·miRNA参与抗逆反应 | 第29-30页 |
| ·miRNA的研究方法 | 第30-31页 |
| ·miRNA的鉴定分离 | 第30-31页 |
| ·miRNA靶基因的预测和验证 | 第31页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第31-32页 |
| 第二章 中国李‘Nubiana’种胚胚轴和实生苗上胚轴离体再生体系的建立 | 第32-44页 |
| ·前言 | 第32页 |
| ·材料与方法 | 第32-36页 |
| ·植物材料 | 第32-33页 |
| ·技术路线 | 第33页 |
| ·初代培养基的筛选 | 第33-34页 |
| ·抗氧化剂对外植体褐化的影响 | 第34页 |
| ·碳源的筛选 | 第34-35页 |
| ·再生苗的继代增殖 | 第35页 |
| ·生根培养 | 第35-36页 |
| ·炼苗与移栽 | 第36页 |
| ·培养条件 | 第36页 |
| ·试验数据统计方法 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-41页 |
| ·初代培养基对‘Nubiana’李种胚胚轴和上胚轴离体再生的影响 | 第36-37页 |
| ·抗氧化剂对外植体褐化的影响 | 第37-38页 |
| ·不同碳源对外植体愈伤组织形成的影响 | 第38-39页 |
| ·再生苗的继代培养 | 第39-40页 |
| ·生根培养 | 第40页 |
| ·炼苗与移栽 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-44页 |
| ·激素浓度配比对中国李‘Nubiana’种胚胚轴和实生苗上胚轴外植本不定芽再生的影响 | 第41页 |
| ·外植体褐化现象及其克服 | 第41-42页 |
| ·不同碳源对外植体愈伤组织形成的影响 | 第42页 |
| ·不同激素配比对‘Nubiana’李再生苗的继代和增殖的影响 | 第42-43页 |
| ·IBA对‘Nubiana’生根培养的影响 | 第43页 |
| ·不同炼苗方法对‘Nubiana’炼苗与移栽的影响 | 第43-44页 |
| 第三章 欧洲李‘Tardicots’叶柄和叶片离体再生体系的建立及再生苗与母株遗传稳定性RAPD分析 | 第44-56页 |
| ·前言 | 第44页 |
| ·材料与方法 | 第44-49页 |
| ·植物材料 | 第44页 |
| ·初代培养基的筛选 | 第44-45页 |
| ·不同暗培养时间对外植体再生的影响 | 第45页 |
| ·碳源的筛选 | 第45-46页 |
| ·再生苗的继代和增殖 | 第46页 |
| ·生根培养 | 第46页 |
| ·炼苗与移栽 | 第46页 |
| ·再生苗的随机扩增多态性DNA(RAPD)分析 | 第46-48页 |
| ·DNA的提取与检测 | 第46页 |
| ·引物设计 | 第46-47页 |
| ·RAPD PCR反应体系 | 第47页 |
| ·RAPD PCR反应程序 | 第47-48页 |
| ·电泳检测 | 第48页 |
| ·培养条件 | 第48页 |
| ·试验数据统计方法 | 第48-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-52页 |
| ·初代培养基对‘Tardicots’李叶柄与叶片外植体离体再生的影响 | 第49-50页 |
| ·暗培养时间对欧洲李叶柄和叶片再生的影响 | 第50页 |
| ·不同碳源对欧洲李叶柄和叶片再生的影响 | 第50-51页 |
| ·Ad对‘Tardicots’李再生苗的继代和增殖的影响 | 第51页 |
| ·生根培养 | 第51-52页 |
| ·炼苗与移栽 | 第52页 |
| ·再生苗的随机扩增多态性DNA(RAPD)分析 | 第52页 |
| ·讨论 | 第52-56页 |
| ·初代培养基对‘Tardicots’李叶柄和叶片外植体不定芽再生的影响 | 第52-54页 |
| ·不同暗培养时间对‘Tardicots’李叶柄和叶片外植体再生的影响 | 第54页 |
| ·不同碳源对‘Tardicots’李叶柄和叶片外植体愈伤组织诱导的影响 | 第54页 |
| ·‘Tardicots’李再生苗的继代和增殖 | 第54-55页 |
| ·IBA对‘Tardicots’李再生苗生根培养的影响 | 第55页 |
| ·炼苗与移栽 | 第55页 |
| ·再生苗与母株的随机扩增多态性DNA(RAPD)分析 | 第55页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片外植体初代培养中内生菌污染问题 | 第55-56页 |
| 第四章 欧洲李‘Tardicots’叶柄和叶片愈伤组织差异分析 | 第56-70页 |
| ·前言 | 第56页 |
| ·材料与方法 | 第56-59页 |
| ·植物材料 | 第56-57页 |
| ·石蜡切片观察 | 第57页 |
| ·Solexa高通量测序技术鉴定‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织中的miRNA | 第57页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织小RNA文库构建和Solexa测序 | 第57-59页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织smallRNA分析 | 第57-58页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织miRNA靶基因的预测 | 第58页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织预测miRNA实验验证 | 第58-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-68页 |
| ·石蜡切片观察 | 第59-60页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片愈伤组织总RNA的检测 | 第60页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片愈伤组织中smallRNA的种类分布及数量… | 第60-63页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片愈伤组织smallRNA中unique序列的长度分布与表达丰度 | 第63-64页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片愈伤组织新miRNAs的预测 | 第64-66页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片愈伤组织中miRNAs靶基因的预测 | 第66页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄与叶片愈伤组织中miRNAs验证结果 | 第66-68页 |
| ·讨论 | 第68-70页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片外植体不同培养时期石蜡切片观察 | 第68页 |
| ·‘Tardicots’李叶柄和叶片外植体愈伤组织Solexa高通量测序 | 第68-70页 |
| 第五章 根癌农杆菌介导的GFP基因转化欧洲李叶柄初探 | 第70-75页 |
| ·前言 | 第70页 |
| ·材料与方法 | 第70-72页 |
| ·试验材料 | 第70-71页 |
| ·试验方法 | 第71-72页 |
| ·外植体材料对卡那霉素(Km)敏感性试验 | 第71页 |
| ·外植体材料对头孢霉素(Cef)敏感性试验 | 第71页 |
| ·农杆菌侵染液的制备 | 第71页 |
| ·侵染与共培养 | 第71-72页 |
| ·筛选培养、再生 | 第72页 |
| ·结果与分析 | 第72-73页 |
| ·外植体材料对Km敏感性试验 | 第72-73页 |
| ·头孢霉素对‘Tardicots’李叶柄再生的影响 | 第73页 |
| ·筛选培养、再生 | 第73页 |
| ·讨论 | 第73-75页 |
| 小结 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-89页 |
| 图版和图版说明 | 第89-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 附录 | 第104-110页 |
