| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 1 文献综述 | 第16-38页 |
| ·土壤盐碱化对农业生产的影响 | 第16-17页 |
| ·植物耐盐机制 | 第17-21页 |
| ·盐胁迫对植物造成的伤害 | 第17-19页 |
| ·植物耐盐策略 | 第19-21页 |
| ·植物离子平衡调节机制 | 第21-24页 |
| ·盐胁迫对植物Na~+和K~+含量的影响 | 第21-22页 |
| ·K~+/Na~+离子平衡化策略 | 第22-24页 |
| ·植物Na~+/H~+逆向转运蛋白研究进展 | 第24-29页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白的分子组成及生化性质 | 第24-25页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白与耐盐性的关系 | 第25-26页 |
| ·植物液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白的研究进展 | 第26-28页 |
| ·植物质膜Na~+/H~+逆向转运蛋白研究进展 | 第28-29页 |
| ·植物钾离子转运蛋白研究进展 | 第29-35页 |
| ·高亲和性钾离子转运蛋白 | 第30-33页 |
| ·低亲和性钾离子转运蛋白 | 第33页 |
| ·植物钾离子通道蛋白 | 第33-34页 |
| ·植物钾吸收转运体基因的遗传转化研究 | 第34-35页 |
| ·獐茅及其耐盐机理研究 | 第35-36页 |
| ·本论文研究目的及意义 | 第36-38页 |
| 2 獐茅NHX基因的克隆 | 第38-61页 |
| ·实验材料 | 第38-40页 |
| ·植物材料及处理 | 第38页 |
| ·菌种与载体 | 第38-39页 |
| ·主要药品 | 第39页 |
| ·培养基 | 第39页 |
| ·主要试剂配制 | 第39页 |
| ·主要实验仪器 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40-50页 |
| ·AlNHX1基因cDNA全序列的克隆 | 第40-48页 |
| ·AlNHX1基因编码蛋白的分析 | 第48页 |
| ·AlNHX1基因在獐茅基因组中的拷贝数分析 | 第48-50页 |
| ·结果与分析 | 第50-59页 |
| ·AlNHX1基因cDNA全序列的克隆 | 第50-55页 |
| ·AlNHX1基因编码蛋白的同源性分析 | 第55-57页 |
| ·AlNHX1基因编码蛋白的系统发育分析 | 第57页 |
| ·AlNHX1基因编码蛋白的疏水性分析 | 第57-58页 |
| ·AlNHX1基因在獐茅基因组中的拷贝数分析 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 3 AlNHX1基因植物表达载体构建及烟草表达 | 第61-81页 |
| ·实验材料 | 第61-62页 |
| ·植物材料 | 第61页 |
| ·菌种与载体 | 第61页 |
| ·主要药品 | 第61页 |
| ·培养基 | 第61页 |
| ·主要配制试剂 | 第61-62页 |
| ·主要试验仪器 | 第62页 |
| ·实验方法 | 第62-69页 |
| ·AlNHX1基因植物表达载体的构建 | 第62-65页 |
| ·AlNHX1基因的烟草转化 | 第65-67页 |
| ·转AlNHX1基因烟草的耐盐生理试验 | 第67-69页 |
| ·结果与分析 | 第69-78页 |
| ·AlNHX1基因植物表达载体的构建 | 第69-72页 |
| ·AlNHX1基因的烟草转化及分子检测 | 第72-73页 |
| ·转AlNHX1基因烟草的耐盐生理检测 | 第73-78页 |
| ·讨论 | 第78-79页 |
| ·小结 | 第79-81页 |
| 4 AlNHX1基因启动子克隆及其表达调控的研究 | 第81-100页 |
| ·实验材料 | 第81-82页 |
| ·植物材料 | 第81页 |
| ·主要药品 | 第81页 |
| ·培养基 | 第81页 |
| ·主要配制试剂 | 第81页 |
| ·主要试验仪器 | 第81-82页 |
| ·实验方法 | 第82-87页 |
| ·AlNHX1基因诱导表达模式检测 | 第82页 |
| ·AlNHX1基因启动子区域的克隆 | 第82-84页 |
| ·AlNHX1基因启动子删除系列与GUS基因融合表达 | 第84-87页 |
| ·结果与分析 | 第87-97页 |
| ·AlNHX1基因的转录表达模式 | 第87-88页 |
| ·AlNHX1基因启动子的克隆与分析 | 第88-92页 |
| ·AlNHX1基因启动子删除系列与GUS基因融合表达 | 第92-97页 |
| ·讨论 | 第97-99页 |
| ·小结 | 第99-100页 |
| 5 獐茅HAK基因的克隆 | 第100-115页 |
| ·实验材料 | 第100-101页 |
| ·植物材料及处理 | 第100页 |
| ·菌种与载体 | 第100页 |
| ·主要药品 | 第100-101页 |
| ·培养基 | 第101页 |
| ·主要试剂 | 第101页 |
| ·实验方法 | 第101-106页 |
| ·A1HAK1基因cDNA全序列的克隆 | 第101-106页 |
| ·A1HAK1基因在獐茅基因组中的拷贝数分析 | 第106页 |
| ·A1HAK1基因表达模式分析 | 第106页 |
| ·结果与分析 | 第106-113页 |
| ·A1HAK1基因的克隆及序列分析 | 第106-110页 |
| ·A1HAK1基因编码蛋白的同源性分析 | 第110-111页 |
| ·A1HAK1基因编码蛋白的系统发育分析 | 第111-112页 |
| ·A1HAK1基因编码蛋白的疏水性分析 | 第112页 |
| ·A1HAK1基因在獐茅基因组中的拷贝数分析 | 第112-113页 |
| ·A1HAK1基因的转录表达模式 | 第113页 |
| ·讨论 | 第113-114页 |
| ·小结 | 第114-115页 |
| 6 A1HAK1基因的酵母功能互补表达 | 第115-129页 |
| ·实验材料 | 第115-116页 |
| ·质粒和菌种 | 第115页 |
| ·主要药品 | 第115页 |
| ·主要培养基 | 第115-116页 |
| ·主要试验仪器 | 第116页 |
| ·实验方法 | 第116-121页 |
| ·A1HAK1基因酵母表达载体的构建与转化 | 第116-120页 |
| ·转化A1HAK1基因酵母的功能分析 | 第120-121页 |
| ·结果与分析 | 第121-127页 |
| ·A1HAK1基因酵母表达载体的构建 | 第121-124页 |
| ·A1HAK1基因转化高亲和性K~+吸收缺陷型酵母 | 第124-125页 |
| ·酵母功能互补试验 | 第125-126页 |
| ·转化A1HAK1基因酵母K~+耗竭试验 | 第126页 |
| ·Na~+对转化A1HAK1基因酵母生长的影响 | 第126-127页 |
| ·转化A1HAK1基因酵母对K~+吸收的亲和性 | 第127页 |
| ·讨论 | 第127-128页 |
| ·小结 | 第128-129页 |
| 7 A1HAK1基因植物表达载体的构建及烟草表达 | 第129-145页 |
| ·实验材料 | 第129-130页 |
| ·植物材料 | 第129页 |
| ·菌种与载体 | 第129页 |
| ·主要药品 | 第129页 |
| ·培养基 | 第129页 |
| ·主要配制试剂 | 第129页 |
| ·主要试验仪器 | 第129-130页 |
| ·实验方法 | 第130-132页 |
| ·A1HAK1基因植物表达载体的构建 | 第130页 |
| ·A1HAK1基因的烟草转化 | 第130-132页 |
| ·转A1HAK1基因烟草的生理检测 | 第132页 |
| ·结果及分析 | 第132-142页 |
| ·A1HAK1基因植物表达载体的构建 | 第132-134页 |
| ·A1HAK1基因的烟草转化及分子检测 | 第134-136页 |
| ·转A1HAK1基因烟草的耐盐生理检测 | 第136-142页 |
| ·讨论 | 第142-144页 |
| ·小结 | 第144-145页 |
| 结论与展望 | 第145-148页 |
| 结论 | 第145-146页 |
| 创新点摘要 | 第146页 |
| 有待进一步开展的工作 | 第146-147页 |
| 展望 | 第147-148页 |
| 参考文献 | 第148-158页 |
| 附录Ⅰ 缩略语 | 第158-160页 |
| 附录Ⅱ 论文中所用的DNA Marker | 第160-161页 |
| 附录Ⅲ 论文中所用载体结构 | 第161-164页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第164-165页 |
| 致谢 | 第165-166页 |
| 个人简介 | 第166-167页 |
