摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略词表 | 第8-9页 |
1 文献综述 | 第9-15页 |
·植物转基因的基本方法 | 第9-11页 |
·基因枪转化法 | 第9-10页 |
·电击法: | 第10页 |
·PEG介导法 | 第10-11页 |
·激光微束法 | 第11页 |
·草坪草遗传转化方法 | 第11-12页 |
·原生质体转化方法 | 第11页 |
·不依赖于原生质体的转化方法 | 第11-12页 |
·根癌农杆菌介导的植物转基因 | 第12-14页 |
·根癌农杆菌Ti质粒的结构和功能 | 第12-13页 |
·T-DNA转移的影响因素 | 第13页 |
·外源基因整合和表达鉴定 | 第13-14页 |
·本研究的目的意义 | 第14-15页 |
2 材料和方法 | 第15-23页 |
·再生体系优化 | 第15页 |
·肌醇对愈伤诱导的影响 | 第15页 |
·CuSO_4.5H_2O对愈伤诱导的影响 | 第15页 |
·不同固化剂对愈伤诱导的影响 | 第15页 |
·不同PH值对愈伤诱导的影响 | 第15页 |
·长期继代愈伤组织的高频再生 | 第15页 |
·根癌农杆菌介导P_(SAG12)-IPT基因的转化 | 第15-23页 |
·转化用植物材料 | 第15-16页 |
·转化载体及培养方法 | 第16-17页 |
·实验所用培养基 | 第17-18页 |
·潮霉素(Hyg)有效筛选浓度的实验 | 第18-19页 |
·农杆菌对羧节青霉素敏感性实验 | 第19页 |
·农杆菌菌液浓度对农杆菌侵染的影响实验 | 第19页 |
·不同的甘露醇浓度对农杆菌侵染的影响实验 | 第19页 |
·预培养时间对农杆菌侵染的影响实验 | 第19-20页 |
·不同侵染时间对农杆菌侵染的影响实验 | 第20页 |
·共培养基不同PH值对农杆菌侵染的影响实验 | 第20页 |
·gus基因表达的组织化学法检测 | 第20-21页 |
·转基因植株的分子检测 | 第21-22页 |
·数据统计和分析 | 第22-23页 |
3. 结果与分析 | 第23-33页 |
·再生体系优化 | 第23-26页 |
·肌醇对愈伤诱导的影响 | 第23页 |
·CuSO_4.5H_2O对愈伤诱导的影响 | 第23-24页 |
·不同固化剂对愈伤诱导的影响 | 第24-25页 |
·不同PH值对愈伤诱导的影响 | 第25页 |
·长期继代愈伤组织的高频再生 | 第25-26页 |
·根癌农杆菌介导P_(SAG12)-IPT基因的转化 | 第26-33页 |
·潮霉素(Hyg)有效筛选浓度确定 | 第26-27页 |
·愈伤对潮霉素的筛选压确定 | 第26页 |
·再生苗对潮霉素的筛选压确定 | 第26-27页 |
·农杆菌对羧苄敏感性实验 | 第27页 |
·农杆菌菌液浓度对农杆菌侵染的影响实验 | 第27页 |
·不同浓度的甘露醇对农杆菌侵染的影响实验 | 第27-28页 |
·不同预培养时间对农杆菌侵染的影响实验 | 第28-29页 |
·不同的低盐预培养基和共培养培养基对农杆菌侵染的影响实验 | 第29页 |
·不同侵染时间对农杆菌侵染的影响实验 | 第29-30页 |
·共培养培养基的不同PH值对农杆菌侵染的影响实验 | 第30-31页 |
·GUS基因的组织化学检测 | 第31页 |
·抗性植株的PCR检测 | 第31-32页 |
·遗传转化体系建立 | 第32-33页 |
4. 问题与讨论 | 第33-36页 |
·转化用愈伤组织的状态 | 第33页 |
·侵染时间的长短 | 第33页 |
·低盐预培养和共培养 | 第33-34页 |
·共培养基中Ca~(2+)、PO4~(3-)、KT、2,4-D与农杆菌的侵染 | 第34页 |
·另一个绿期延长基因的转化 | 第34页 |
·关于PCR检测 | 第34-35页 |
·下步工作 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-41页 |
图版和说明 | 第41-45页 |
致谢 | 第45页 |